Как правильно сдать мокроту на общий или бактериологический анализ и что показывают эти исследования? Исследование мокроты: цели и методы исследования Лабораторное исследование мокроты.

Слизь, выделяемая при болезнях дыхательных органов, называется . При отсутствии воспалительного процесса чрезмерной выработки и отхождения данного секрета не наблюдается. В норме происходит незначительное производство мокроты, которая обычно незаметно проглатывается человеком. Основная функция трахеобронхиальной слизи – это очищение дыхательных путей от вдыхаемой пыли и других частиц. Мокрота состоит из иммуноглобулинов, белков, макрофагов, гликопротеинов, лимфоцитов.

Исследование мокроты в условиях лаборатории проводится для уточнения диагноза при патологиях дыхательных органов, легких или бронхов. Чрезмерное выделение слизи и наличие в ней посторонних примесей может свидетельствовать о серьезных заболеваниях. Анализ мокроты проводится в следующих целях:

• Диагностика патологий легких.
• Определение особенностей заболевания.
• Оценка эффективности проводимой терапии.
• Отслеживание динамики при хронических патологиях легких.

Если у пациента наблюдается длительный кашель с обильным выделением секрета, то возникает необходимость в проведении клинического анализа мокроты, особенно если при рентгеноскопии были выявлены темные пятна на грудной клетке. До осуществления лабораторного исследования трахеобронхиальной слизи о заболеваниях можно судить по ее внешнему виду, консистенции, запаху и по другим показателям. Речь идет о следующих ее видах:

• Мокрота зеленого цвета свидетельствует о застойных явлениях, о гайморите.
• Жемчужно-белый цвет слизи указывает на злокачественный процесс в бронхах.
• Большое количество крови вместе с мокротой – это крайняя степень туберкулеза или рака легких.
• Прозрачная жидкость может выделяться при бронхите.
• Гнойная мокрота с резким неприятным запахом, выделяемая после сильных болезненных ощущений в грудной клетке, часто свидетельствует о разрыве гнойника, о гангрене легких и т. д.
• Слизь с янтарным оттенком выделяется при аллергии.
• Прожилки крови в слизи обнаруживаются при кровотечениях в легких либо при .
• Жидкая и прозрачная с пенистой консистенцией мокрота, в которой присутствуют гнойные включения, указывает на хронический бронхит либо на туберкулез легких.
• Слизистые выделения ржавого цвета могут быть при воспалении легких.

Лабораторное бактериологическое исследование мокроты назначается при подозрении на тяжелые патологии легких и бронхов, например, туберкулез, инфекционные поражения, раковый процесс и др. При отсутствии подозрительных включений, нормальном цвете и консистенции проводится общий анализ мокроты, позволяющий оценить состояние бронхов и легких.

Основные виды исследований:

• Выявление микобактерий туберкулеза.
• Микроскопический или общий анализ.
• Исследование секрета на атипичные клетки при высокой вероятности злокачественного процесса в легких.
• Бактериологическое исследование при инфекционных заболеваниях легких.

Особенности процесса сбора мокроты могут быть различными в зависимости от того, какой именно вид исследования проводится. Чаще всего забор биоматериала происходит в утреннее время, но при необходимости и в другое время суток. Перед тем как откашляться, следует тщательно почистить зубы и прополоскать полость рта антисептическим раствором, например, фурацилином или слабым раствором марганцовки. Сплевывать выделения нужно в специальную стерильную емкость.

Перед сбором мокроты для лабораторного исследования, проводимого в целях выявления заболевания легких или бронхов, следует правильно подготовить свой организм. Выполнение следующих рекомендаций облегчит данный процесс:

• За день до предполагаемой процедуры принимать отхаркивающие препараты, пить больше теплой воды.
• Проводить процедуру в утреннее время, поскольку за ночь слизь накапливается в нужном количестве и легко отходит.
• Если не удается откашлять слизь, то нужно сделать ингаляцию либо несколько раз подряд глубоко вдохнуть и выдохнуть воздух.
• Сплевывать материал желательно только в специальный контейнер, продающийся в аптеках.
• Во время процедуры следить, чтобы в стерильную емкость попала только мокрота, но не слюна.

Сам процесс сбора мокроты выглядит следующим образом: пациент должен глубоко вдохнуть и медленно выдохнуть воздух, повторить несколько раз. Затем начать интенсивно откашливаться, чтобы выделилось достаточное количество слизи, и сплюнуть ее в контейнер. Емкость нужно плотно закрыть крышкой и поместить в холодильник. Исследование данного биологического материала должно быть проведено в течение двух часов после сбора, иначе в нем могут начать размножаться патогенные микроорганизмы, присутствие которых искажает результаты исследований.

Сбор материала при проведении бронхоскопии

– это диагностическая процедура, предназначенная для исследования дыхательных путей. Проводится при абсцессах в легких, пневмонии, туберкулезе. Бронхоскопия также назначается при невозможности получения мокроты естественным образом, и при необходимости исследования трахеобронхиальной слизи без примесей слюны и содержимого носоглотки.

Процедура противопоказана после перенесенного инфаркта, при легочной и сердечной недостаточности, при обострении бронхиальной астмы, нервно-психических отклонениях и т. д. Перед проведением диагностики пациент должен сдать анализы крови, сделать электрокардиограмму, рентгенографическое исследование легких. Описание бронхоскопии:

• Используется местная либо общая анестезия.
• Бронхоскоп вводится в трахею и легкие через носовую или ротовую полость, берется образец слизи.
• После окончания процедуры больному запрещено принимать препараты, разжижающие кровь, такие как аспирин.

Лабораторные анализы

После сбора мокроты и сдачи в лабораторию происходит комплексное исследование биоматериала, необходимое для уточнения диагноза. Таким образом становится возможным выявить самые различные патологии. Основные этапы исследования мокроты:

• Микроскопический.
• Бактериологический.

Клинический анализ предполагает исследование цвета и запаха биологической жидкости, ее количества, наличия или отсутствия посторонних примесей. В процессе выполнения данного лабораторного анализа происходит выявление особенностей течения болезни в легких и в других дыхательных органах. Микроскопическое исследование – это изучение образца трахеобронхиальной слизи под микроскопом. Используется для обнаружения эозинофилов, спиралей Куршмана, лейкоцитов и т. д.

Бактериальный посев на микрофлору необходим для определения конкретного возбудителя заболевания. Данный вид исследования назначается при выявлении повышенного содержания лейкоцитов в мокроте. Этот анализ также позволяет выяснить, к какому антибактериальному препарату имеется чувствительность у микроорганизмов, являющихся возбудителями патологии. Бактериологическое исследование мокроты часто проводится при подозрении на туберкулез легких.

Оценка результатов анализа

Нередко результаты анализа мокроты оказываются неверными. Это связано с неправильным сбором или хранением биологического материала, проникновением в него других веществ или жидкостей, с несвоевременным исследованием слизи.

Расшифровывает полученные результаты лечащий доктор, а лечебный курс назначается с учетом других лабораторных и инструментальных исследований. В норме рассматриваемая жидкость имеет слизистую структуру, прозрачность, в ней не должны присутствовать гнойные включения, прожилки крови, посторонний запах и т. д.

• Избыток эозинофилов свидетельствует о бронхиальной астме или о гельминтозе легких.
• Выявление большого количества нейтрофилов указывает на инфекционные поражения легких (туберкулез, острый и и др.).
• При бронхиальной астме отмечается наличие спиралей Куршмана в слизи.
• Обнаружение кристаллов Шарко-Лейдена подтверждает диагноз бронхиальная астма.

При неправильном сборе трахеобронхиальной слизи в процессе исследования обнаруживается повышенная концентрация клеток эпителия плоского типа (более 25). Часто это наблюдается при большом количестве слюны в биоматериале. А также это может быть связано с распадом тканей легких при распространенном туберкулезе либо при воспалении легких с абсцессом. Направление на исследование мокроты выдают следующие специалисты:

• Терапевт.



Соблюдение врачебных рекомендаций, касающихся правильного сбора биоматериала, поможет получить наиболее достоверные результаты исследований, на основании которых назначается правильное лечение выявленных патологий легких и других органов дыхания.

Плевральной жидкости

Транссудаты , как правило, стерильны, однако, они могут инфицироваться при многократных пункциях.

Экссудаты также иногда стерильны (ревматические плевриты, рак легкого, лимфосаркома). В гнойных экссудатах при бактериоскопии окрашенного по Граму мазка или при посеве на питательные среды выявляется разнообразная микрофлора (пневмококки, стрептококки, стафилококки, энтерококки, клебсиеллы, кишечная палочка и др.). Для целенаправленного лечения определяют чувствительность микроорганизмов к антибиотикам. В гнилостных экссудатах обнаруживается анаэробная флора. В серозных, геморрагических экссудатах туберкулезной этиологии можно обнаружить бациллы Коха (микобактерии туберкулеза). Для этого экссудат подвергают длительному центрифугированию или обработке методом флотации.

Пробой Ривальта определяется белковое вещество - серозомуцин.

Исследование мокроты

Мокрота - патологическое отделяемое дыхательных органов: легких, бронхов, трахеи. Выделяется при кашле или отхаркивании. К мокроте, как правило, примешивается секрет полости рта (слюна) и слизь из носоглотки. Потому очень важным в исследовании мокроты является тщательное соблюдение правил ее сбора.

Для клинического лабораторного исследования берется утренняя порция мокроты до приема пищи после тщательного полоскания рта и горла. Мокрота собирается в чистую сухую стеклянную банку или чашку Петри. Лабораторное исследование мокроты включает макроскопическое (количество, характер, консистенция и запах, наличие примесей), микроскопическое исследование, бактериологическое, а также посев мокроты на питательные среды для выявления возбудителя и определения его чувствительности к антибиотикам.

При необходимости мокроту сохраняют в прохладном месте, лучше в холодильнике.

Доставленную в лабораторию мокроту, вначале исследуют макроскопически (т.е. определяют физические свойства).

Количество мокроты (за сутки) зависит от характера патологического процесса. Бронхит, бронхиальная астма, крупозная пневмония обычно сопровождаются скудным (2-5 мл) отделением мокроты - единичными плевками. При вскрытии абсцесса легкого, гангрене характерно выделение мокроты в большом количестве, которое может доходить иногда до 1-2 литров в сутки.

Характер: мокрота неоднородна. В ее состав входят слизь, гной, кровь, серозная жидкость, фибрин. Содержание в мокроте указанных субстратов определяет ее характер.

Характер мокроты может быть: слизистый, слизисто-гнойный, слизисто-гнойно-кровянистый, серозный, серозно-гнойный, кровянисто-слизистый.

При описании мокроты принято ставить преобладающий субстрат на второе место.

Цвет зависит от:

Характера мокроты (преобладание одного из субстратов придают ей соответствующий оттенок);

Вдыхаемых частиц, окрашивающих мокроту. Сероватый, желтоватый, зеленоватый цвет мокроты зависит от содержания и количества гноя.

Ржавый, красный, коричневатый, желтый цвет - от примеси крови и продуктов её распада. Серый и чёрный цвета придают мокроте уголь и пыль, белый - мучная пыль.

Вдыхаемая пыль, содержащая красители, может окрашивать мокроту в голубой и другие цвета.

Консистенция зависит от состава мокроты. Вязкая консистенция наблюдается при наличии слизи, клейкая - при большом количестве фибрина, полужидкая - от присутствия серозной жидкости в слизисто - гнойной мокроте, жидкая - от наличия серозной жидкости.

Запах неприятный запах свежевыделенной мокроты определяется при абсцессе лёгкого, а гнилостный - при гангрене, распаде злокачественной опухоли. В остальных случаях свежевыделенная мокрота запаха не имеет.

Деление на слои наблюдается в случаях выделения мокроты при опорожнении обширных полостей в лёгком (абсцесс лёгкого, бронхоэктазы). Нижний, плотный слой состоит из гноя, детрита, верхний слой - жидкий. На поверхности его иногда имеется третий - пенистый слой.

Микроскопическое исследование мокроты состоит из изучения нативных и окрашенных препаратов. В нативном препарате могут встречаться эпителиальные клетки, лейкоциты, единичные эритроциты, друзы актиномикоза, элементы эхинококка, кристаллы жирных кислот и гематоидина, тяжи слизи.

Можно рассмотреть в нём элементы бронхиальной астмы: эозинофилы в большом количестве, кристаллы Шарко-Лейдена и спирали Куршмана.

Эозинофилы представляют собой округлые образования тёмно-серого цвета.

Кристаллы Шарко-Лейдена - блестящие, прозрачные, часто имеющие форму октаэдров и ромбиков. Считается, что они белковой природы, образуются при разрушении эозинофилов.

Спирали Куршмана - слепки прозрачной слизи со спастически сокращенных бронхов.

Эластические волокна можно также видеть в нативном препарате. Они образуются в результате распада ткани лёгких. Эластические волокна обнаруживаются при туберкулёзе и абсцессе лёгкого. Они представляют собой двухконтурные блестящие образования.

Лейкоциты всегда содержатся в мокроте в большем или меньшем количестве, в зависимости от ее характера. Чем больше гноя в мокроте, тем больше лейкоцитов.

Эритроциты имеют вид дисков желтоватого цвета. Единичные эритроциты могут встречаться в любой мокроте. В большом количестве обнаруживаются в мокроте, окрашенной кровью (легочное кровотечение, инфаркт легкого, застой в малом круге кровообращения, новообразование легкого)

Клетки плоского эпителия попадают в мокроту из полости рта, носоглотки.

Атипические клетки при злокачественных новообразованиях.

Альвеолярные макрофаги относят к клеткам гистиоцитарной системы. В препаратах располагаются в виде крупных скоплений, чаще в слизистой мокроте с небольшим количеством гноя. Обнаруживаются при разнообразных патологических процессах (пневмонии, бронхиты, профессиональные заболевания).

Бактериологическое исследование мокроты заключается в посеве мокроты на специальные среды и используется в том случае, если бактериоскопическое исследование не позволяет обнаружить предполагаемого возбудителя. Бактериологическое исследование позволяет идентифицировать вид микробов, определять их вирулентность. В клинической практике мокрота может являться материалом для определения чувствительности микробов к антибиотикам.

Контрольные вопросы

1. Назовите метод получения плевральной жидкости.

2. Что такое транссудат и причины его возникновения?

3. Что такое экссудат и причины его возникновения?

4. Отличие транссудата от экссудата.

5. Диагностическое значение микроскопического исследования плевральной жидкости.

6. Перечислите виды экссудатов.

7. Назовите причины геморрагического экссудата. Перечислите его особенности.

8. Что такое хилезный экссудат? Когда он наблюдается?

9. Что такое хилезоподобный экссудат? Перечислите его отличия от хилезного экссудата.

10. Назовите отличительные признаки серозного и гнойного экссудатов.

11. Что такое мокрота? Как производится сбор мокроты для лабораторного и микробиологического исследования?

12. Значение макроскопического исследования мокроты.

13. Диагностическое значение количества мокроты.

14. Какой цвет мокроты может наблюдаться?

15. С чем связано появление «ржавой» мокроты? Когда это наблюдается?

16. Диагностическое значение характера мокроты.

17. Значение микроскопического исследования мокроты.

18. Что такое спирали Куршмана? Когда они появляются?

19. Диагностическое значение эластических волокон в мокроте.

20. О чем свидетельствует появление кристаллов Шарко-Лейдена?

21. Что такое пробки Дитриха? Когда они появляются в мокроте?

22. Чем отличаются пробки Дитриха от «рисовидных телец»?

23. Значение бактериологического исследования мокроты.

Контрольные задачи

1. Больной с наличием жидкости в плевральной полости справа до II ребра поступил в приемное отделение больницы, где предложено срочно удалить жидкость. Как называется процедура по изъятию жидкости из плевральной полости? По каким топографическим линиям ее проводят?

2. У больного с недостаточностью кровообращения выявлено наличие жидкости в плевральной полости. Жидкость какого происхождения накопилась в плевральной полости?

3. У больного с длительным ревматическим анамнезом обнаружена жидкость в плевральной полости. Какого происхождения жидкость в плевральной полости?

4. При проведении плевральной пункции больному получен геморрагический экссудат. Какой процесс можно заподозрить в данном случае?

5. При проведении плевральной пункции получена жидкость с относительной плотностью 1,010, содержание белка - 15 г/л, проба Ривальты отрицательная. Оцените характер жидкости.

6. С диагностической целью больному произведена плевральная пункция, при которой получена жидкость желто-зеленого цвета. Содержание белка 52 г/л, проба Ривальты положительная. Оцените характер жидкости.

7. Перед сбором утренней порции мокроты больной забыл почистить зубы и произвести туалет полости рта. Достоверный ли результат лабораторного исследования мокроты в данном случае?

8. При макроскопическом исследовании мокрота прозрачная, стекловидная, при микроскопическом исследовании обнаружено большое количество эозинофилов, спирали Куршмана, кристаллы Шарко-Лейдена. Для какого заболевания характерен данный анализ мокроты?

9. При исследовании мокроты обнаружены эластические волокна в большом количестве, кристаллы холестерина. Для какого процесса характерен данный анализ мокроты?

10. При окраске мокроты по Циль-Нильсону выявлено большое количество микроорганизмов. Для выявления каких микроорганизмов применяется данная окраска?

11. У больного на фоне резкого удушья выделяется обильное количество жидкой, опалесцирующей пенистой мокроты. Для какого состояния характерно данное макроскопическое исследование мокроты?

12. У больного кашель с выделением умеренного количества слизисто-гнойно-кровянистой мокроты, содержащей плотные беловатые комочки «рисовидные тельца». О какой патологии можно думать в этом случае?




Похожая информация.




Исследование мокроты предусматривает определение физи­ческих свойств мокроты, ее микроскопическое исследование в нативном мазке и бактериологическое исследование в окрашен­ных препаратах.

Сбор материала

Мокроту, получаемую при откашливании утром до приема пи­щи, собирают в чистую сухую склянку. Перед исследованием боль­ной должен почистить зубы и тщательно прополоскать рот водой.

Физические свойства

Мокроту помещают в чашку Петри, рассматривают на светлом и темном фоне, описывают ее свойства. Количество мокроты за сутки при различных патологических процессах может быть раз­лично: так например, при бронхите - скудное (5-10 мл), при абсцессе легкого, бронхоэктазах - большое количество (до 200--300 мл).

Деление на слои наблюдается в случаях опорожнения боль­ших полостей в легком, например, абсцесса легкого. В этом случае мокрота образует 3 слоя: нижний слой состоит из детри­та, гноя, верхний слой - жидкий, на поверхности его иногда имеется третий - пенистый слой. Такую мокроту называют трехслойной.

Характер: характер мокроты определяет содержание слизи, гноя, крови, серозной жидкости, фибрина. Характер ее может быть слизистый, слизисто-гиойный, слизисто-гнойно-кровянистый и т.п.

Цвет: зависит от характера мокроты, от выдыхаемых частиц, которые могут окрашивать мокроту. Так например, желтоватый, зеленоватый цвет зависит от наличия гноя, "ржавая" мокрота -от распада эритроцитов, встречается при крупозной пневмонии. Прожилки крови в мокроте или красная мокрота может быть при примеси крови (туберкулез, бронхоэктазы). Серый и черный цвет придает мокроте уголь.

Консистенция: зависит от состава мокроты, жидкая - в ос­новном от наличия серозной жидкости, клейкая - при наличии слизи, вязкая - фибрина.

Запах: свежевыделенная мокрота обычно без запаха. Непри­ятный запах свежевыделенной мокроты обычно появляется при абсцессе легкого, при гангрене легкого - гнилостный.

Микроскопическое исследование

Нативные препараты готовят, выбирая материал из разных мecт мокроты, берут также для исследования все частицы, выде­ляющиеся окраской, формой, плотностью.

Отбор материала производят металлическими палочками, по­мещают его на предметное стекло и покрывают покровным. Мате­риал не должен выходить за покровное стекло.

Лейкоциты: всегда содержатся в мокроте, количество их зависит от характера мокроты.

Эозинофилы: распознаются в нативном препарате по более темной окраске и наличию в цитоплазме четкой, одинаковой, пре­ломляющей свет зернистости. Часто располагаются в виде больших скоплений. Эозинофилы встречаются при бронхиальной астме, других аллергических состояниях, гельминтозе, эхинококке лег­кого, новообразованиях, эозинофильном инфильтрате.




Эритроциты: имеют вид дисков желтого цвета. Единичные эритроциты могут встречаться в любой мокроте, в большом коли­честве - в мокроте, содержащей примесь крови: новообразовани­ях легкого, туберкулезе, инфаркте легкого.

Клетки плоского эпителия: попадают в мокроту из полости рта, носоглотки, большого диагностического значения не тлеют.

Цилиндрический мерцательный эпителий: выстилает слизистую оболочку гортани, трахеи, бронхов. В большом количестве обнаруживается при острых катарах верхних дыхательных путей, бронхитах, бронхиальной астме, новообразованиях легкого, пневмосклерозе и др.

Альвеолярные макрофаги: большие клетки различной величи­ны, чаще круглой формы, с наличием в цитоплазме включений черно-бурого цвета. Встречаются чаще в слизистой мокроте с небольшим количеством гноя. Обнаруживаются при различных па­тологических процессах: пневмонии, бронхитах, профессиональ­ных заболеваниях легких и др. Альвеолярные макрофаги, содер­жащие гемосидерин, старое название - "клетки сердечных поро­ков", имеют в цитоплазме золотисто-желтые включения. Для их выявления применяют реакцию на берлинскую лазурь. Ход реакции: кусочек мокроты помещают на предметное стекло, прибавляют 2 капли 5% раствора соляной КИОЛОТЫ и 1-2 капли 5% раствора желтой кровяной соли. Перемешивают стеклянной палочной и по-крывают покровным стеклом. Гемосидерин, лежащий внутриклеточно, окрашивается в голубой или синий цвет. Эти клетки обнару­живаются в мокроте при застойных явлениях в легких, инфарктах легкого.

Жирное перерождение клетки (липофаги, жировые шары): чаще округлые, цитоплазма их заполнена жиром. При прибавлении к препарату судана Ш капли окрашиваются в оранжевый цвет. Группы таких клеток встречаются при новообразованиях легкого, актиномикозе, туберкулезе и др.

Эластические волокна: в мокроте имеют вид извзитых блес­тящих волокон. Как правило располагаются на фоне лейкоцитов и детрита. Наличие их указывает на распад ткани легкого. Обнаруживаются при абсцессе, туберкулезе, новообразованиях легко­го.

Коралловые волокна: Грубые ветвящиеся образования с буг­ристыми утолщениями вследствие отложения на волокнах жирных кислот и мыл. Их обнаруживают в мокроте при кавернозном тубер­кулезе.

Обызвествленные эластические волокна - грубые, пропитанные солями извести палочковидные образования. Обнаруживают при распаде петрифицированного очага, абсцессе легкого, ново­образованиях, Элемента распада петрифицированнго очага носят название тетрады Эрлиха: I) обызвествленные эластические во­локна; 2)аморфные соли извести; 3) кристаллы холестерина; 4) микобактерии туберкулеза.

Спирали Куршма на_- уплотнены, закрученные в спираль слизевые образования. Центральная часть резко преломляет свет и выглядит спиралью, по периферии свободно лежащая слизь обра­зует мантию. Спирали Куршмана образуются при бронхиальной астме.

Кристаллические образования: кристаллы Шарко-Лейдена, вы­тянутые блестящие ромбы, можно обнаружить в желтоватых кусоч­ках мокроты, содержащих большое количество эозинофилов. Их образование связывают с распадом эозинофилов,

Кристаллы гематоидина: имеют форму ромбов и иголок золо­тистого цвета. Образуются при распаде гемоглобина при крово­излияниях, распаде новообразований. В препарате мокроты видны обычно на фоне детирита, эластических волокон.

Кристаллы холестерина: бесцветные четырехугольники с обло­манными ступенеобразным углом, обнаруживаются при распаде жирно перерожденных клеток, в полостях. Встречаются при туберку­лезе, абсцессе легкого, новообразованиях.

Пробки Дитриха: мелкие желтовато-серые зернышки с непри­ятным запахом, содержатся в гнойной мокроте. Микроскопически представляют собой детрит, бактерии, кристаллы жирных кислот в виде игл и капелек жира. Образуются при застое мокроты в полостях при абсцессе легкого, бронхоэктазах.

Бактериологическое исследование

Исследование на туберкулезные микобактерии: Препарат готовят из гнойных частиц мокроты, высушивают

на воздухе и фиксируют над пламенем горелки. Окрашивают по

Цилю-Нильсону.

Методика окрашивания: Реактивы:

I) карболовый фуксин,

2) 2% спиртовой раствор соляной кислоты,

3) водный раствор 0,5% метиленового синего.

Ход окраски:

1. На препарат кладут кусочек фильтровальной бумаги и наливают раствор карболового фуксина.

2. Препарат нагревают над пламенем горелки до появления паров, охлаждают и снова нагревают (так 3 раза).

3. С остывшего стекла снимают фильтровальную бумагу. Обесцвечивают мазок в солянокислом спирте до полного отхождения краски.

4. Промывают водой.

5. Докрашивают препарат метиленовнм синим 20-30 секунд.

6. Промывают водой и высушивают на воздухе. Микроскопируют с иммерсионной системой. Туберкулезные микобактерии окрашиваются в красный цвет,

все остальные элементы мокроты и бактерии - в синий. Туберку­лезные микобактерии имеют вид тонких, слегка изогнутых пало­чек с утолщениями на концах или посередине.

При окраске по Цилю-Нильсону в красный цвет красятся также кислотоупорные сапрофиты. Дифференциальная диагностика туберкулезных микробактерий и кислотоупорных сапрофитов ведет­ся методами посева и заражения животных.

Исследование мокроты может проводиться также методом фло­тации. Метод Потенжера: ход исследования:

1. Свежевыделенную мокроту (не более 10-15 мл) помещают в узкогорлую бутылку, приливают двойное количество едкой ще­лочи, смесь энергично встряхивают (10-15 мин).

2. Приливают I мл ксилола (можно бензина, толуола) и около 100 мл дистиллированной вода для разжижения мокроты. Снова встряхивают 10-15 мин.

3. Доливают дистиллированную воду до горлышка бутылки и оставляют стоять на 10-50 мин.

4. Образовавшийся верхний слой (беловатый) снимают по каплям пипеткой и наносят на предметные стекла, предвари­тельно нагретые до 60°. Каждую последующую каплю наносят на подсохшую предыдущую.

5. Препарат фиксируют и красят по Цилю-Нильсону.

Исследование на другие бактерии:

Другие бактерии, встречающиеся в мокроте, например, стрептококки, стафилококки, диплобациллы и др. могут быть распознаны только методом посева. Бактериологическое иссле­дование препарата в этих случаях имеет только ориентировоч­ное значение. Препараты красят метиленовым синим, фуксином или по граму. Окраска по Граму: Реактивы: I) карболовый раствор генцианвиолета,

2) раствор Люголя,

3) 96° спирт,

4) 40% раствор карболового фуксина.

Ход исследования:

1. На фиксированный препарат кладут полоску фильтроваль­ной бумаги, наливают раствор генцианвиолета, красят 1-2 мин.

2. Бумажку снимают и препарат заливают раствором Люголя на 2 минуты.

3. Раствор Люголя сливают и прополаскивают препарат в спирте до серого цвета.

4. Промывают водой и окрашивают 10-15 секунд раствором фуксина.

Оснащение.

Ф.И.О. пациента,

адрес или № истории болезни,

дата направления на исследование.

2. Стерильная, широкогорлая банка с крышкой из крафт- бумаги, берется в

бактериологической лаборатории.

Методика взятия мокроты.

1. Собирают мокроту утром до еды.
2. Вечером и за 1,5 – 2 часа до исследования почистить зубы.
3. Непосредственно перед исследованием прополоскать рот и глотку кипяченой водой.
4. Объяснить больному, что во время сбора мокроты он не должен касаться краев стерильной посуды руками, ртом. Не касаться внутренней поверхности крышки. А после откашливания сразу закрыть банку крышкой.
5. Откашлять и собрать мокроту. Не менее 5 мл.
6. Доставить в лабораторию не позднее 1 – 1,5 часов после сбора.

Диагностическое значение.

Выявляют возбудителя патологического процесса (делают посев на питательные среды), а так же можно произвести подбор антибиотика эффективного при данном возбудителе (то есть определить чувствительность возбудителя к тому или иному антибиотику).

Сбор мокроты на микобактерии туберкулеза методом флотации.

Оснащение.

Ф.И.О. пациента,

адрес или № истории болезни,

дата направления на исследование

2. Чистая стеклянная широкогорлая банка из темного стекла с завинчивающейся крышкой

(так как на свету микобактерии туберкулеза гибнут)

Методика сбора мокроты.

1. Мокрота собирается в течение суток.
2. Если мокрота отходит в малом количестве, то сбор происходит в течение 3 суток. Плевательница в этом случае хранится в прохладном, темном, сухом месте.
3. Для достоверного анализа необходимо 15 – 20 мл мокроты.
4. Предупредить, что мокрота собирается только при откашливании, а не при отхаркивании.
5. Необходимо соблюдать правила личной гигиены до и после сбора мокроты.

Диагностическое значение.

Выявление в мокроте возбудителя туберкулеза – микобактерия туберкулеза.

Сбор мокроты на атипичные клетки.

Подготовка пациента и правила сбора такие же, как для общего клинического анализа.

Н О! Исследуется свежевыделенная мокрота, так как атипичные клетки быстро разрушаются.

Иногда применяют предварительные ингаляции с протеолитическим ферментом трипсином, способствующим выхождению мокроты из наиболее глубоких отделов бронхиального дерева.




Бронхоскопия.

Бронхоскопия – метод осмотра бронхов с помощью специального прибора бронхофиброскопа.

Цели процедуры:

1. Диагностика.

Визуально осмотрев слизистую бронхов крупного и среднего калибра, можно обнаружить эрозии, язвы, воспалительные изменения, новообразования.

С помощью специальных щипчиков можно взять кусочек тканей из подозрительного места

для цитологического и гистологического исследования

1. Лечебная.

Можно извлечь инородное тело, удалить полипы. Можно извлечь гнойную, вязкую мокроту, а так же ввести в полость бронха антибиотики и другие лекарственные вещества.

Цели подготовки :

1. Информировать пациента о предстоящей процедуре и получить его согласие.
2. Подготовить необходимое оснащение для обеспечения четкого выполнения исследования.

Оснащение:

1. Бронхоскоп
2. Резиновые перчатки
3. Шприцы 10 и 20 мл
4. Раствор анестетика (новокаин 1%, тримекаин 5%, лидокаин 2%)
5. Раствор атропина 0,1%
6. Раствор димедрола 1%
7. Направление на исследование
8. Набор для помощи при анафилактическом шоке

Информация для пациента по подготовке к исследованию.

1. В доступной форме предоставить пациенту или его родственникам информацию о сути и целях предстоящего исследования. Получить согласие.
2. Предупредить пациента, что в день исследования нельзя есть, пить, курить.
3. Накануне вечером по назначению врача провести премедикацию транквилизаторами.
4. Непосредственно перед исследованием предложить пациенту опорожнить мочевой пузырь.
5. Придти в эндоскопический кабинет с полотенцем и направлением в назначенное время.

Методика проведения исследования:

1. Непосредственно перед исследованием, за 15 мин, по назначению врача ввести пациенту подкожно 0,1% 1 мл аптропина, 1% 1 мл димедрола.
2. Надеть стерильные перчатки.
3. Попросить пациента сесть на стул, слегка запрокинув голову.
4. Провести анестезию верхних дыхательных путей.
5. Ассистировать врачу при проведении бронхоскопии.
6. После окончания процедуры сбросить перчатки и отработанные инструменты в дезраствор.
7. Проводить пациента в палату, предупредить о необходимости не принимать пищу и не курить в течение 2 часов после исследования.

Постуральный дренаж.

Это использование определенного положения тела – специальные «дренажные» позы и упражнения с форсированным удлиненным выдохом для улучшения отхождения мокроты.

Противопоказания:

1. Кровохарканье.
2. Возникновение во время процедуры значительной одышки или приступа удушья.
3. Повышение артериального давления.
4. Головокружение.
5. Аритмии.

Алгоритм действия:

1. Объяснить пациенту смысл и цели процедуры.
2. Получить его согласие.
3. Приготовить плевательницу.
4. Придать одно из дренажных положений.
5. Наблюдать за состоянием пациента и правильностью выполнения процедуры.
6. Повторить процедуру 3 – 5 раз с перерывами в 10 – 15 минут.
7. Придать пациенту обычное положение в постели.
8. Провести дезинфекцию мокроты и плевательницы.
9. Протоколирование о выполненной процедуре в сестринской карте.

Методика выполнения процедуры:

1. Упражнения выполняются 2 раза в день – утром и вечером.
2. Предварительно принимают отхаркивающие средства – настой термопсиса, багульника, мать-и-мачехи.
3. Через 20 – 30 минут после этого больной поочередно занимает дренажные положения (смотри ниже).
4. В каждом положении больной выполняет вначале 4 – 5 глубоких медленных дыхательных движений, вдыхая воздух через нос, а выдыхая через сжатые губы. Затем после медленного глубокого вдоха производится форсированный выдох с настойчивым покашливанием 3 – 5 раз.

Хороший результат достигается при сочетании дренажных положений с различными методами вибрации грудной клетки.

А. Лежа в кровати больной поворачивается вокруг продольной оси своего тела и в промежуточных положениях (45˚) делает форсированные выдохи. Необходимо совершить полный оборот на 360˚.

Бактериологическое исследование мокроты даёт возможность обнаружить возбудителей различных заболеваний. Важное значение для постановки диагноза имеет нахождение в мокроте туберкулёзных микобактерий. Мокроту для бак – исследования на посев собирают в стерильную посуду (широкогорлую). Посуда выдаётся бак – лабораторией.

ВНИМАНИЕ!!!

Если мокроты мало, её можно собирать до 3-х суток, сохраняя её в прохладном месте.

Мокроту на бак – посев у туберкулёзных больных для достоверности результата собирают в течение 3-х дней, в разные стерильные ёмкости (3 банки).

При необходимости назначения антибиотиков, мокроту исследуют на чувствительность к ним. Для этого пациент утром, после споласкивания рта, откашливается и сплёвывает несколько раз мокроту (2-3 раза) в стерильную чашку Петри, которую тут же направляют в лабораторию.

ВНИМАНИЕ!!!

Дайте чёткий инструктаж пациенту об использовании стерильной посуды для сбора мокроты на анализ:

а) не касаться краёв посуды руками

б) не касаться краёв ртом

в) после отхаркивания мокроты посуду сразу закрыть крышкой.

Т/О п.7

В бак – лабораторию

Мокрота на микрофлору и

чувствительность к

антибиотикам (а/б)

Сидоров С.С. 70 лет

3/IV– 00 г. подпись м/с

Анализ мокроты на бактериологическое исследование.

Цель : обеспечить качественную подготовку к исследованию и своевременное получение результата.

Подготовка : информирование и обучение пациента.

Оснащение : стерильная банка (плевательница), направление.

Последовательность выполнения:

Объяснить пациенту (члену семьи) смысл и необходимость предстоящего исследования и получить его согласие на исследование.

А) в стационарных условиях:

инструктаж и обеспечение лабораторной посудой провести накануне вечером;

Б) в амбулаторных и стационарных условиях объяснить пациенту особенности подготовки:

накануне вечером тщательно почистить зубы;

утром после сна тщательно прополоскать рот кипячёной водой

Проинструктировать пациента о правилах обращения со стерильной лабораторной посудой и о сборе мокроты:

Откашляться, открыть крышку банки (плевательницы) и сплюнуть мокроту, не касаясь краёв банки;

Сразу же закрыть крышку.

Попросить пациента повторить всю информацию, задать вопросы по технике подготовки и сбора мокроты.

Указать, к каким последствиям приведёт нарушение рекомендаций медсестры.

А) в амбулаторных условиях:

Дать направление на исследование, заполнив его по форме;

Объяснить пациенту, куда и какое время он (семья) должны принести банку и направление.

Б) в условиях стационара:

Указать место и время, куда принести банку (плевательницу);

Доставить собранный материал в бактериологическую лабораторию не позднее 1,5 – 2,0 часов после сбора материала.

Хранение материала даже в условиях холода недопустимо!

Взятие кала на анализ.

Большую помощь в распознавании ряда заболеваний, в том числе и желудочно-кишечных, оказывает исследование кала. Определение основных свойств кала путём осмотра даёт возможность сделать ряд диагностических выводов и доступно сестре.

Суточное количество кала у здорового человека зависит от качества и количества пищи, и в среднем равно 100 – 120 г. Если всасывание нарушено, а скорость продвижения по кишечнику увеличена (энтериты), количество кала может достигать 2500 г, при запорах же кала очень мало.

В норме – опорожнение кишечника совершается один раз в сутки, обычно в одно и то же время.

ВНИМАНИЕ!!!

Для исследования кал лучше брать после самостоятельного акта дефекации в таком виде, в каком он выделяется.

бактериологически

макроскопически

Кал исследуют микроскопически

химически

Макроскопически определяют:

А) цвет, плотность (консистенцию)

Б) форму, запах, примеси

Цвет –в норме

при смешанной пище – желтовато-бурый, коричневый;

при мясной – тёмно-коричневый;

при молочной – жёлтый или светло-жёлтый;

у новорожденного – зеленовато-жёлтый.

ПОМНИТЕ!!! Цвет кала могут изменить:

Фрукты, ягоды (черника, смородина, вишня, мак и др.) – в тёмный цвет.

Овощи (свекла, морковь и др.) – в тёмный цвет.

Лекарственные вещества (соли висмута, железа, йода) – в чёрный.

Наличие крови даёт калу чёрный цвет.

Консистенция (плотность) кала мягкая.

При различных патологических состояниях кал может быть:

Кашицеобразным

Умеренно плотным

2. Полужидким

   Замазкообразным (глинистым), часто бывает серого цвета и зависит от значительной примеси не усвоенного жира.

Форма кала – в норме цилиндрическая или колбасовидная.

При спазмах кишечника кал может быть лентовидным или в виде плотных шариков (овечий кал).

Запах кала зависит от состава пищи и интенсивности процессов брожения и гниения. Мясная пища даёт резкий запах. Молочная – кислый.