Помещение для содержания лабораторных животных. Общие методические и организационные подходы к проведению исследований и учебной практики по зоологии позвоночных

Рис. 1. Операция выделения и пересечения ветвей возвратных нервов для создания беззвучного лая у собак.
1-левая доля щитовидной железы; 2 - возрастная ветвь блуждающего нерва; 3 - левая грудино-подъязычная мышца (оттянута крючком); 4 - пищевод; 5-трахея.

Комната, где располагаются клетки с животными, должна хорошо вентилироваться, относительная влажность воздуха должна быть в пределах 40-45%. Даже при наличии приточно-вытяжной вентиляции с целью снижения содержания в воздухе аммиака и продуктов жизнедеятельности животных рекомендуется применять торфяные подстилки или опилки с добавлением суперфосфата. Процесс уборки клеток может быть автоматизирован; уборка осуществляется 1-2 раза в сутки.
На передней стенке клетки устанавливают кормушку, автопоилку и вешают табличку, на которую заносят основные данные о животном, виде оперативного вмешательства и т. д.
Кроликов и морских свинок нередко содержат вне помещений вивария. Для этого используют клетки, располагая их в несколько ярусов, под общей крышей. Наружное содержание способствует выращиванию здоровых, более стойких к различным заболеваниям кроликов и большей частью распространено в питомниках.

Глава 13. ПРАВИЛА ВЗЯТИЯ ПАТОЛОГИЧЕСКОГО МАТЕРИАЛА И ПЕРЕСЫЛКИ ЕГО ДЛЯ ЛАБОРАТОРНОГО ИССЛЕДОВАНИЯ

(Извлечение из Правил Главного управления ветеринарии Министерства сельского хозяйства СССР, утвержденных 24 июня 1971г.)

При необходимости определить или подтвердить причину заболевания или гибели животных (включая птиц, зверей, пчел, рыб), при подозрении на инфекционную или инвазионную болезнь или на отравление ветеринарный врач (фельдшер) обязан взять соответствующий патологический материал и направить его в ветеринарную лабораторию для исследования.

Во всех случаях взятия и пересылки материала специалист обязан руководствоваться изложенными ниже правилами, а также соответствующими инструкциями по борьбе с болезнями животных.

Взятие и пересылка патологического материала для бактериологического и вирусологического исследования. Патологический материал берут стерильными инструментами в стерильную посуду. Поверхность органа (ткани), от которого будут брать патологический материал, на месте разреза обжигают над пламенем или прижигают нагретой металлической пластинкой.

Патологический материал берут как можно раньше после смерти животного, особенно в теплое время года. При начавшемся разложении материал для исследования негоден.

В лабораторию материал отправляют в неконсервированном виде. Если доставить в лабораторию в течение ближайших 24-30 ч материал невозможно, то его консервируют.

Для бактериологического исследования патологический материал (органы или их части) консервируют в 30%-ном водном растворе химически чистого глицерина. Воду предварительно стерилизуют кипячением или автоклавированием в течение 30 мин. В качестве консерванта можно применять также стерильное вазелиновое масло. Материал заливают консервирующей жидкостью в количестве, в 4-5 раз превышающем его объем.

Материал, предназначенный для вирусологического исследования, консервируют в 30-50%-ном растворе химически чистого глицерина на физиологическом растворе поваренной соли. Физиологический раствор предварительно стерилизуют в автоклаве при 120 °С в течение 30 мин.

Небольшие трупы животных (поросята, ягнята, телята), а также трупы мелких животных посылают целыми в непроницаемой таре.

Трубчатые кости направляют целыми с неповрежденными концами. Предварительно их тщательно очищают от мышц и сухожилий и завертывают в марлю или полотно, смоченные дезинфицирующей жидкостью (5%-ный раствор карболовой кислоты). Кости можно также посыпать натрия хлоридом (поваренной солью) и завернуть в полотно или марлю.

Кишечник перед посылкой для бактериологического и вирусологического исследований освобождают от содержимого, а концы его перевязывают. На исследование посылают части кишечника с наиболее характерными патологическими изменениями. Помещают в банки с 30-40%-ным водным раствором глицерина или насыщенным водным раствором натрия хлорида. Объем консервирующей жидкости должен в 5-7 раз повышать объем взятого материала.

Кал для исследования отправляют в стерильных стаканах, пробирках или банках, которые закрывают пергаментной бумагой. От трупов животных кал можно послать в отрезке невскрытого кишечника, завязанного с обоих концов. В лабораторию кал должен быть доставлен не позднее 24 ч после взятия.

При посылке для исследования участков кожи берут наиболее пораженные части ее размером 10 х 10 см и кладут в стерильную, герметически закрывающуюся посуду.

Кровь, гной, слизь, мочу, желчь и другой жидкий патологический материал для бактериологического и вирусологического исследований посылают в запаянных пастеровских пипетках, стерильных пробирках или во флаконах, плотно закрытых стерильными резиновыми пробками.

Предметные стекла кипятят в течение 10-15 мин в 1-2%-ном водном растворе соды, затем тщательно промывают чистой водой, насухо вытирают и помещают в раствор спирта и эфира, взятых в равных частях, где и хранят до употребления.

Кровь берут из вены ушной раковины или края верхушки уха, у птиц - с поверхности гребня или из подкрыльцовой вены. Шерсть на месте взятия крови выстригают, кожу протирают ватными тампонами, смоченными сначала спиртом и затем эфиром. Инструменты (иглы, скальпель) должны быть стерильными.

Первую каплю крови удаляют стерильной ватой (исключение делается при исследовании крови на пироплазмидозы, когда для мазка берут первую каплю крови), а следующую свободно выступившую каплю берут на предварительно подготовленное предметное стекло быстрым и легким прикосновением к капле поверхностью стекла. Затем стекло быстро поворачивают вверх каплей и удерживают между пальцами левой руки в горизонтальном положении. К левому краю капли прикасаются под углом 45° шлифованным краем другого предметного (или покровного) стекла. Как только капля равномерно распределится по ребру этого стекла, его быстро проводят по поверхности предметного стекла слева направо, не доводя до края на 0,5-1 см. Ширина мазков должна быть уже предметного стекла. Для каждого нового мазка берут свежую каплю крови.

Готовые мазки крови высушивают только на воздухе. В холодное время года мазки делают в теплом помещении или на стеклах, подогретых на крышке теплого стерилизатора.

Метод фиксации мазков зависит от цели исследования.

Правильно приготовленные мазки крови должны быть тонкими, равномерными и достаточной длины. На высушенных мазках и отпечатках острым предметом делают надпись с указанием номера или клички животного и даты приготовления мазка.

Мазки из тканей, гноя, органов и различных выделений готовят путем размазывания материала на предметном стекле стерильной палочкой или ребром другого предметного стекла до тонкого слоя. Частицы органов плотной консистенции, твердые узелки, а также вязкий материал заключают между двумя предметными стеклами и растирают. Затем стекла разъединяют, растаскивая их в противоположные стороны в горизонтальном направлении. Получаются два довольно тонких мазка. Иногда делают препараты-отпечатки. Для этого вырезанный острым скальпелем кусочек органа захватывают пинцетом и свободной поверхностью кусочка делают на стекле несколько тонких отпечатков.

Взятие материала для патологогистологического исследования. Материал берут от свежих трупов или убитых животных не позднее 12, а летом - 2-3 ч после смерти от тех органов или тканей, где обнаружены патологические изменения, а также из главнейших паренхиматозных органов. Из разных участков патологически измененных органов (тканей) вырезают небольшие тонкие (не более 1- 2 см толщиной) кусочки. Вместе с пораженными участками ткани захватывают и граничащую с ней нормальную ткань. При иссечении кусочка учитывают микроскопическое строение (структуру) того или иного органа (ткани). Так, кусочки из почки, надпочечника, лимфатического узла берут с таким расчетом, чтобы попадали оба слоя - корковый и мозговой; из головного мозга - серое и белое вещество; из селезенки - белую и красную пульпу; из легкого - части органа с бронхами и плеврой. Из сердца берут несколько кусочков: из мышцы правого и левого желудочков, правого и левого предсердий, папиллярных мышц и области клапанов. Из всех органов при иссечении захватывают и их капсулу. Из разных отделов желудочно-кишечного тракта вырезают небольшие кусочки размером 2 х 3 см и перед погружением в фиксирующую жидкость их растягивают на картон и прошивают белыми нитками.

Взятый материал помещают в фиксирующую жидкость (10%-ный водный раствор нейтрального формалина), объем которой в 4-5 раз превышает объем взятого материала. В холодное время года во избежание промерзания при пересылке материал, профилированный в формалине, перекладывают в 30-50%-ный раствор глицерина (приготовленный на 10%-ном растворе формалина), в 70%-ный спирт или в насыщенный раствор натрия хлорида.

Если формалина нет, то в качестве фиксирующей жидкости используют 96%-ный этиловый спирт или ацетон. При применении спирта толщина кусочков не должна превышать 0,5 см. Для гистохимических исследований патологический материал можно фиксировать также в жидкости Карнуа (спирт абсолютный - 60 мл, хлороформ - 30 мл и ледяная уксусная кислота - 10 мл) или в жидкости Буэна (концентрированная пикриновая кислота - 15 мл, формалин - 5 мл, ледяная уксусная кислота - 1 мл). Фиксирующую жидкость меняют каждые сутки до тех пор, пока она не станет прозрачной. Оптимальная температура фиксации 37 °С.

Патологический материал фиксируют в стеклянной или в крайнем случае в глиняной посуде.

На банку с кусочками органов и тканей наклеивают этикетку, на которой указывают номер или кличку животного и кому принадлежит, а внутрь ее опускают кусочек плотной бумаги или картона с написанным на нем простым (не химическим) карандашом номером животного.

Помещать в посуду несколько объектов исследования от разных животных можно только при том условии, если каждый из них завязывают в марлю вместе с отдельной этикеткой.

Упаковка и пересылка патологического материала. Трупы мелких животных, части трупов крупных животных и отдельные органы в свежем (нефиксированном) виде отправляют для исследования в лабораторию только с нарочным. Посылаемый материал, особенно от животных, подозрительных по заболеванию инфекционной болезнью, тщательно упаковывают в плотный деревянный или металлический ящик, чтобы предупредить возможность рассеивания возбудителя инфекции в пути. Перед упаковкой материал завертывают в холст или мешковину, смоченную дезинфицирующим раствором (фенольным креолином, лизолом, известковым молоком), обертывают целлофаном или полиэтиленовой пленкой и кладут в ящик со стружками, мякиной или опилками.

Части органов, жидкости, отправляемые в лабораторию почтой в фиксированном или консервированном виде, помещают в герметически закупоренную стеклянную посуду с притертой стеклянной, пластмассовой, резиновой или корковой пробкой. Пробку закрепляют проволокой или бечевкой и заливают менделеевской замазкой (сургучом, смолкой, парафином или воском), чтобы укупорка была непроницаемой для жидкости. Укупоренную посуду вкладывают в прочно сбитый ящик, плотно обкладывают ватой, паклей, стружками, опилками или другим упаковочным материалом.

При пересылке почтой или с нарочным патологического материала от животных, подозрительных по заболеванию инфекционной болезнью, или явно инфицированного материала упаковка должна гарантировать доставку материала в целости и исключить возможность рассеивания возбудителей инфекции. На лицевой стороне посылки вверху должны быть надписи: «Осторожно - стекло» и «Верх».

Стеклянную посуду, в которой заключен посылаемый материал с подозрением на наличие особо опасных болезней (сап, сибирская язва, эмфизематозный карбункул, бруцеллез, туляремия, перипневмония крупного рогатого скота, чума крупного рогатого скота, чума свиней, псевдочума птиц, ящур, бешенство), обязательно упаковывают в металлическую коробку, которую запаивают, пломбируют или опечатывают, а затем упаковывают еще в деревянный ящик.

Если такой материал отправляют с нарочным, его кладут в стеклянную посуду, герметически закупоривают и помещают в деревянный ящик.

Взятие и отправка патологического материала при подозрении на отравление. Подозрение на отравление могут вызвать следующие признаки:

а) характерный запах содержимого желудка (горькоминдальный, чесночно-хлороформенный и т. п. при исключении запаха примененных лекарств);

б) окраска содержимого желудка: желтая (от азотной и пикриновой кислот, солей хрома), зеленая, синяя (от солей меди) или иного цвета;

в) кровянистое содержимое желудка;

г) подозрительные включения в содержимом желудка - белые кристаллы сулемы и стрихнина, нерастворившиеся белые кристаллы мышьяка;

д) набухшие, увеличенные, дряблые, легко разрывающиеся серо-желтой окраски и т. п. слизистая оболочка желудка, почки, сердце;

е) поражения начальных отделов пищеварительного тракта (ротовой полости, пищевода, желудка);

ж) изменение цвета и консистенции крови.

При подозрении на отравление в лабораторию направляют материал от трупов павших животных для химического и гистологического исследований. Одновременно с целью определения источника отравления посылают все корма (по 1 кг корма каждого вида), которые скармливали животным. Обязательно посылают остатки кормов из кормушки.

Для химического исследования в лабораторию посылают в отдельных банках следующий материал:

а) часть пищевода и пораженную часть желудка с содержимым (в количестве 0,5 кг), а от крупного и мелкого рогатого скота и верблюдов - часть пищевода, сычуга и небольшое количество содержимого из разных мест сычуга, рубца.

Желудок и его содержимое берут в следующем порядке.

При вскрытии трупа после осмотра внутренних органов перевязывают лигатурами пищевод и двенадцатиперстную кишку вблизи стенки желудка (по две лигатуры) и перерезают между ними. Желудок извлекают и кладут в кюветы, а затем вскрывают. Содержимое желудка предварительно (не выбирая из желудка) перемешивают (нельзя использовать металлические предметы), после чего осторожно, чтобы не загрязнить, берут часть его;

б) отрезок тонкого кишечника (длиной до 40 см) в наиболее пораженной части вместе с содержимым (до 0,5 кг);

в) отрезок толстого кишечника ^длиной до 40 см) в наиболее пораженной части вместе с содержимым (до 0,5 кг);

г) часть печени (0,5-1 кг) с желчным пузырем (от крупных животных), печень целиком (от мелких животных);

е) мочу в количестве 0,5 л;

ж) скелетную мускулатуру в количестве 0,5 кг.

Кроме того, в зависимости от особенностей предполагаемого отравления дополнительно посылают:

а) при подозрении на отравление через кожу (путем инъекции) - часть кожи, клетчатки и мышцы из места предполагаемого введения яда;

б) при подозрении на отравление газами (сероуглеродом и т. д.) - наиболее полнокровную часть легкого (в количестве 0,5 кг), трахею, часть сердца, 200 мл крови, часть селезенки и головного мозга. От мелких животных (в т<9к числе и от птиц) берут органы целиком.

При вскрытии отрытого из земли трупа животного берут: сохранившиеся внутренние органы в количестве до 1 кг; скелетную мускулатуру в количестве 1 кг, землю под трупом 0,5 кг из двух-трех мест.

Для гистологического исследования посылают небольшие кусочки, размером 1 х 3 х 5 см, следующих органов: печени; почек (обязательно с наличием коркового и мозгового слоев); сердца; легкого; селезенки; языка; пищевода; желудка; тонкого и толстого кишечника; скелетной мускулатуры; лимфоузлов; головного мозга (половину мозга в стерильной банке).

Кусочки берут из пораженных участков органов и на границе с ними из непораженной части ткани и помещают в 10%-ный раствор формалина (из расчета на 1 часть патологического материала 10 частей раствора формалина).

При подозрении на отравление веществами, употребляемыми для борьбы с сельскохозяйственными вредителями, минеральными удобрениями, красками, посылают пробы их в количестве от 100 до 1000 г.

От больных животных при подозрении на отравление посылают: рвотные массы, желательно первые порции; мочу (все количество, которое удалось получить); кал в количестве 0,5 кг; содержимое желудка, полученное через пищеводный зонд; корма и вещества, которые могли явиться причиной отравления.

Если заподозрено, что отравление наступило вследствие поедания ядовитых растений, берут для ботанического анализа пробы растений. Для этого деревянную рамку с внутренним размером в 1 м2 накладывают на травостой луга или пастбища в местах выпаса скота. Все оказавшиеся внутри рамки растения срезают под корень. Если травостой однотипный, пробу с 1 га луга или пастбища берут в 3-5 местах, при разнотипном травостое количество проб увеличивают с целью большего охвата различных растений и посылают среднюю пробу.

Если пробу трав", взятых для исследования, можно доставить в лабораторию в течение нескольких часов, траву посылают в сыром виде. В противном случае пробы сушат и доставляют сухими. Пересылают пробы трав в коробках или плетеных корзинах.

Пробы берет ветеринарный специалист или зоотехник.

Материал, взятый для химического исследования, нельзя обмывать и держать вместе с металлическими предметами; его отправляют в чистом, неконсервированном виде. Материал животного происхождения консервируют только в том случае, если он будет доставлен в лабораторию не ранее чем через 3-4 дня после взятия. Для консервирования материала применяют спирт-ректификат в соотношении 1 часть спирта на 2 части материала. Одновременно посылают и пробу спирта (не менее 50 г), которым консервирован материал.

Применять два консервирующих вещества нельзя, так как они сами являются ядами (хлороформ) или разрушают некоторые яды (формалин).

Упаковывают материал в чистые широкогорлые стеклянные или глиняные банки, плотно закрывающиеся стеклянными притертыми пробками, а если таких нет, чистыми, не бывшими в употреблении корковыми пробками или чистой писчей или вощеной бумагой.

Поверх пробки банку обертывают чистой бумагой, обвязывают тонким шпагатом (или толстой крепкой ниткой), концы которого скрепляют сургучной печатью.

На каждую банку наклеивают этикетку, на которой чернилами записывают, какие органы и в каком количестве (по массе) помещены в банку, вид и кличку животного, даты падежа и вскрытия трупа животного, указывают, какое подозревается отравление и кому принадлежит животное.

Взятый материал отправляют в лабораторию немедленно с нарочным.

Порядок оформления и отправки сопроводительных документов к материалу, направляемому на исследование. На каждый отправляемый в лабораторию материал заполняют сопроводительный документ по форме, согласно приложению № 1 настоящих правил.

Сопроводительное письмо посылают в запечатанном конверте (одновременно с материалом) почтой или с нарочным.

В сопроводительном письме указывают: вид, пол и возраст животного, от которого взят материал для исследования, его номер или кличку, сколько банок с материалом, на какое исследование посылается материал, краткое описание клинических признаков и патологоанатомических изменений.

При посылке образцов корма указывают его название, дату взятия образца, с какого угодья. Если корм получен с завода или заготовительного пункта, указывают, с какого именно.

При необходимости к письму полагают дополнительные сведения, в частности, какая помощь оказана животному, какие лекарственные средства применялись, с какого времени скармливали корм животным и т. д. При отправке материал к из рыбохозяйственного водоема указывают клинико-эпизоотологические данные.

К сопроводительному письму на пробы (мазки) крови, направляемые в плановом порядке для серологического или гематологического исследования, прилагают опись проб в двух экземплярах.

Форма сопроводительного документа к патологическому материалу

Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже

Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.

Размещено на http://www.allbest.ru/

Гигиена лабораторных животных

Введение

В лабораторной практике для экспериментальных целей используют в основном мелких животных: кроликов, морских свинок, крыс, мышей, хомячков и др. На животных изучают болезни, проверяют качество вакцин и сывороток, испытывают новые химические и др. препараты. Массовое выращивание лабораторных животных проводят в питомниках - это специализированные животноводческие хозяйства, в которых предъявляют высокую требовательность к качеству выращиваемых животных, прежде всего к состоянию их здоровья. При научно - исследовательских и учебных ветеринарных институтах, лабораториях различной категории и в др. подразделениях имеются так называемые вспомогательные подразделения виварии. Здесь также разводят лабораторных животных для проведения различных опытов.

1. Требования к участку для возведения питомника (вивария)

Для постройки питомников и вивариев надо выбирать возвышенное место с уклоном для стока атмосферных осадков, с водонепроницаемой почвой, низким уровнем стояния грунтовых вод и со свободным доступом воздуха и света. Место должно быть расположено вдали от животноводческих ферм, проезжих дорог, жилых домов и быть обнесено сплошным забором. Желательно, чтобы участки постройки были защищены зеленым массивом от господствующих холодных ветров и заноса снега. Запрещается строительство питомника на территориях бывших скотомогильников, свалок, кожевенных заводов, складов кожсырья, костей и шерстомоек.

Для исключения возможности вспышек и распространения среди лабораторных животных болезней в питомниках и вивариях предусматривают следующие условия:

А) обязательное раздельное содержание больных и здоровых животных;

Б) наличие отдельных помещений для карантина и изолятора;

Территория ферм питомника должна быть разделена на две изолированные зоны - производственную и хозяйственную.

В производственной зоне размещают животных, ветеринарно-санитарный пропускник с дезблоком и бытовыми помещениями, ветеринарный и утилизационный пункты. Выделяют одно или несколько изолированных помещений для размещения животных отобранных для продажи или для вновь приобретаемых животных.

Перед вводом животных на вновь построенную ферму (виварий) всю территорию, производственные и подсобные помещения подвергают тщательной механической очистке и профилактической дезинфекции.

Ветеринарно-санитарный пропускник должен быть расположен при въезде на производственную территорию фермы. В проходной ветеринарно-санитарного пропускника устанавливают круглосуточное дежурство. Ветеринарно-санитарный пропускник обеспечивает работу санитарных блоков в два режима: 1) при благополучной эпизоотической обстановке - без обязательной обработки обслуживающего персонала; 2) при неблагополучной эпизоотологической обстановке - с обязательной санитарной обработкой персонала. Лица не работающие в питомнике должны пройти обязательную санитарную обработку.

Для дезинфекции транспортных средств предусматривают дезинфекционный блок. С этой целью предусматривают дезинфекцию колес проезжающего на территорию автотранспорта в дезбарьере. Его, как правило заполняют опилками, которые пропитывают дезинфицирующим раствором.

В питомниках оборудуют убойно-санитарный пункт (санбойню) для убоя выбракованных животных, вскрытия и утилизации трупов. Он состоит из убойного зала, утилизационного отделения, вскрывочной и отделения для сбора и хранения шкурок животных.

В помещениях питомника (вивария) полы и фундамент должны быть непроницаемы для сточных вод, стены ровные и удобны для влажной уборки и дезинфекции. В помещениях должен поддерживаться оптимальный температурно-влажностный режим: температура 17-18 0 С, относительная влажность не выше 50 %. Освещают помещения лампами дневного света.

В хозяйственной зоне питомника располагают кормоцех и хранилища кормов. Кормоцех и площадку для погрузки и разгрузки животных размещают по границе хозяйственной и производственной зон.

Виварии строят в обособленных зданиях, изолированных от других помещений.

В них предусматривают «чистые» помещения, где содержат незараженных животных с отдельным инвентарём, и помещения, где проводят эксперименты. Кроме того, в вивариях предусматривается санитарный блок (санпропускник с душем и туалет), карантинное помещения для вновь поступающих животных, изолятор, операционная, вскрывочная, секция для взятия проб (анализов), дезинфекционное и моечное отделение, а также диагностический кабинет, помещения для чистого инвентаря, холодильная камера для хранения трупов животных, кормокухня с комнатой для хранения кормов и приготовления пищи, служебный кабинет (комната специалистов), помещение для обслуживающего персонала, отдельное помещение для технического узла (вентиляционно-отопительного и др. оборудования).

При входе в виварий и в каждое его помещение должны быть устроены дезковрики. Земноводных животных и рыб, предназначенных для опытов, обычно располагают в соответственно оборудованные подвальные помещения.

2. Гигиена содержания, кормления, поения и ухода за лабораторными животными

Лабораторных животных разных видов и возрастов необходимо содержать в отдельных помещениях. При необходимости животных разных видов размещают в одном помещении в разных сторонах.

На каждой клетке, боксе, вольере вешают таблички, где записывают данные о животном и вид эксперимента.

Лабораторных животных содержат в клетках со сплошным дном или с поддонами. Подстилку: опилки, стружки, торф, солому - предварительно обеззараживают автоклавированием или в сушильном шкафу при температуре 160-200 0 С в течение 10-15 мин. При необходимости подстилку сжигают.

Клетки чистят ежедневно. Отходы и мусор из клеток, подстилку складывают в специальный железный бочок с плотно закрывающейся металлической крышкой. После заполнения бачки передают в дезинфекционно-моечные отделения для обеззараживания. Чистку, мойку обеззараживание клеток проводят в специальных помещениях. Трупы для вскрытия хранят в холодильнике не менее 1 суток.

Падеж или вынужденный убой животных регистрируется в специальном журнале.

В конце рабочего дня во всех помещениях (секциях) вивария проводят влажную уборку пола с применением дезинфицирующих веществ (1 %-ые растворы хлорамина, едкого натрия и др.).

3. Системы содержания лабораторных животных

Существует три системы содержания и разведения лабораторных животных: открытая, закрытая и изолированная.

Закрытая система - при ней лабораторных животных содержат в хорошо освещенных специальных помещениях, где поддерживается стабильный автоматически регулируемый микроклимат и создаются условия, препятствующие возникновению инфекционных болезней.

Изолированную систему -применяют для выращивания линейных и стерильных (безмикробных) лабораторных животных (гнотобионтов).

В питомниках и вивариях животных разного пола, как правило, содержат отдельно. Для случки подсаживают самок к самцам, а не наоборот, так как самцы при помещении в другое помещение (клетку) становятся боязливыми и их внимание отвлекается от самки. После случки самку снова возвращают на прежнее место. При необходимости случку повторяют.

За оплодотворенными самками необходимо тщательно ухаживать, хорошо кормить, особенно к концу плодоношения. За несколько дней до появления потомства для самок готовят отдельную клетку. Клетка должна быть предварительно очищена и продезинфицирована, иметь достаточное количество сухой и мягкой подстилки.

Кроликов, морских свинок, крыс, мышей и др. мелких грызунов размещают по видам и возрасту в клетках.

Если кролики содержаться на улице, то лучше строить двухъярусные секции, по нескольку секций в ряд, под одной общей водонепроницаемой двух - или односкатной крышей. Пол в клетках оборудуют реечный или сетчатый. В одной стороне клетки устраивают и кормушку и поилку. Для кроликов приняты следующие размеры клеток в см: длина 120-130, ширина 60-70, высота передней стенки 80-90, высота задней стенки 50-55. При содержании кроликов в помещении клетки лучше изготавливать металлические с двойным полом, между которым вставляют поддон. Размеры такой клетки (см): длина 70, ширина 45, высота 50. Двери изготавливают из проволочной сетки с ячейками размером 2-3 см.

Взрослых кроликов размещают по одному в клетке, молодняк до 3 мес. возраста по 3-5 голов. Крольчат в выгулах или в клетках содержат по 10-15 голов из расчёта 0,2-0,4 м 2 на крольчонка. Их необходимо сортировать и содержать по полу. В клетках оборудуют сетчатый пол на высоте 60-70 см от пола помещения и на расстоянии не менее 45-50 см от стен.

Для морских свинок используют двухъярусные клетки с закрытым верхом, непроницаемым для влаги. Примерные размеры одной клетки (см): длина 65 см, ширина 55, высота 40.

Клетки для мышей и крыс обычно металлические, с выдвижными металлическими противнями. Остов клеток изготавливают из углового железа, бока - из металлической сетки. Размеры такой клетки в см: длина 50, ширина 40, высота 30. Клетки ставят в 2 или 3 яруса на стеллажах из углового железа. Первый ярус должен приподниматься от пола на высоту 50 см.

Собак размещают индивидуально в отдельных боксах (кабинах) размером примерно 1,5 м 2 .

Кошек размещают в вольерах по 5 голов. Там же предусматривают устройство полок-лежаков. Площадь на одну кошку 0,5 м 2 . Перед входом в вольер оборудуют сетчатый тамбур.

питание лабораторный животное содержание

4. Кормление и поение лабораторных животных

Мелкие лабораторные животные отличаются высоким уровнем обмена веществ, интенсивностью роста и развития, многоплодностью, короткими сроками беременности и вскармливания потомства. Поэтому для нормального роста и развития лабораторных животных корма должны содержать все необходимые для жизнедеятельности питательные вещества: белки, жиры углеводы, витамины, макро- и микроэлементы.

При несоблюдении правил гигиены кормления лабораторные животные часто гибнут от заболеваний желудочно-кишечного тракта.

Все корма, применяемые для кормления лабораторных животных необходимо проверить в течение 10_ти дней на 10-20 здоровых подопытных животных, которых отсаживают в отдельные клетки. Доброкачественность корма определяют исходя из состояния здоровья подопытного животного. При малейших нарушениях корма бракуют, а пробу их направляют в лабораторию для исследования.

Перед скармливанием концентрированные корма необходимо просеивать. Бобовые корма: боб, горох, фасоль моют в воде и вымачивают 2-4 часа. Овёс, ячмень, пшеница и др. при плохом их поедании 1,5-2 часа распаривают, жмыхи дробят, запаривают и смешивают с отрубями.

Для кроликов и морских свинок зерновые корма необходимо дрожжевать. Для этого молотое или дробленое зерно помещают в специальные деревянные корыта или кадки.

Дрожжи разводят в теплой воде (около 30 °С) до образования дрожжевого молока, затем смешивают их с кормом. Полученную массу оставляют в помещении на 5-6_ти ч при температуре 18-20 °С. Смесь периодически перемешивают. Через девять часов корм готов к употреблению.

Крупу пшеничную, перловую, ячменную перед варкой очищают от примесей, просевают через сито. Корнеплоды очищают от пораженных мест, моют кипяченой водой, затем режут кружочками или ломтиками толщиной: для морских свинок 0,7-1 см, для кроликов 1-3 см, для крыс и мышей 0,5-0,7 см или дают в тертом виде. Сено перед скармливанием просматривают, заплесневелое, затхлое и сгнившее удаляют. Траву для лабораторных животных косят утром или вечером, скошенную траву подсушивают в тени. Слежавшуюся, мокрую и подгнившую траву скармливать запрещается. Готовить вареные корма за несколько дней для скармливания не разрешается. Кормить лабораторных животных лучше 2 раза в сутки: утром и вечером.

Поят лабораторных животных свежей чистой водой (соответствующей ГОСТу), лучше кипячёной но остуженной. Вода должна быть в поилках постоянно. Крысам и мышам лучше давать молоко или овсяный отвар с молоком.

Примерные нормы кормов для лабораторных животных должны составляться исходя возраста и физиологического состояния и физиологии животных.

Количество переваримого протеина в рационах крыс должно составлять 18-20 %, а в рационе мышей - не менее 16 %, в рационе кроликов и морских свинок - 16-20 %. Оптимальное соотношение протеинов, жиров и углеводов в рационах крыс и мышей должно быть 1: 1: 3, а в рационе кроликов и морских свинок - 0,8 - 1: 0,6 - 0,8:5. Потребность кроликов и морских свинок в питательных веществах компенсируется за счет кормов растительного происхождения. Крысам требуется повышенное количество протеинов животного происхождения, так в рационе они должны составлять не менее 1/3 от общего количества протеинов.

Питательность рационов для беременных самок должна быть на 25-30 % выше в начале и на 40-50 % в конце беременности. В период лактации самок энергетическую потребность самок увеличивают в 2 раза. Так, например, у крольчих в связи с длительным содержанием крольчат под самкой потребность в кормах увеличивается в 2 раза в начале лактации, в 3 раза в середине и в 4 раза в конце лактации.

Также необходимо учитывать, что те или иные лабораторные животные усваивают различные питательные вещества корма, не одинаково. Так, кролики и морские свинки хорошо усваивают каротин (провитамин А), содержащийся в рационе, а крысы и мыши усваивают его значительно хуже. Поэтому в рацион витамин А необходимо вводить в виде масляного раствора или рыбьего жира. Морские свинки в отличие от грызунов чувствительны к недостатку витамина С, так как неспособны его синтезировать в организме. Они должны получать его в рационе вместе с зелёными кормами - капустой, свежей хвоей или водных растворов аскорбиновой кислоты.

Для всех лабораторных грызунов основным кормом является зерно злаковых, масличных и бобовых культур: овёс, пшеница, просо, ячмень, кукуруза, горох, боб, фасоль, подсолнечник и зерна льна. Из этих кормов делают смесь или скармливают по отдельности.

В течение года в рацион животных необходимо вводить зелёные и сочные корма: морковь, сахарная и кормовая свекла, брюква, капуста. Для морских свинок необходимы в рационе пророщенное зерно и капуста. Корнеплоды скармливают в сыром виде, для чего их предварительно моют и измельчают.

В теплые периоды года лучшим кормом являются бобовые и злаковые травы. Для улучшения пищеварения в рацион нужно добавлять сено. В качестве минеральных и витаминных добавок в рацион вводят костную муку, трикальцийфосфат, поваренную соль, рыбий жир, тривит, тетравит и дрожжи. Источником витаминов С, Е, К служат сочные корма и зелень.

Кормить животных необходимо согласно распорядку 2-3 раза в сутки. Мясо и субпродукты дают в варёном виде. Из варёного мяса делают фарш. На мясном бульоне варят каши, крупу перед засыпкой моют и добавляют соль. Кашу можно варить на молоке или воде. В кашу добавляют фарш, комбикорм, рыбий жир, рыбную муку и всё тщательно перемешивают.

Для обеспечения полной поедаемости корма следует в суточном рационе необходимо чередовать отдельные виды кормов. Так, например, при трёхразовом кормлении мышей, крыс и хомяков утром можно давать зерновую смесь, зелень, днём - молоко, а вечером сочные корма.

Для кроликов в зависимости от периода года можно использовать следующие виды рационов: зимой - утром 50 % зернового корма и 40 % сена, днём корнеплоды и влажную мешанку, вечером - оставшиеся 50 % зернового корма и 60 % - сена; летом - утром 30 % травы и половину концентрированного корма, днём 30 % зелёной массы, а вечером остальную часть концентрированного корма, влажную мешанку и 40 % травы. Морским свинкам зимой утром дают зерновые корма, капусту и сено, днём молоко, а вечером оставшуюся часть травы, концентратов и влажную мешанку. При кормлении кроликов и морских свинок брикетированными кормами из рациона исключаются концентрированные корма.

Для кроликов и морских свинок можно готовить влажную мешанку из комбикорма, отрубей, каши, дробленого жмыха с добавкой вареного картофеля, соли, рыбьего жира, рыбной или мясо - костной муки и дрожжей.

21.5. Техника безопасности и правила личной гигиены при работе с лабораторными животными.

Все лица, принимаемые на работу в виварий или питомник, должны подвергаться медицинскому осмотру и пройти инструктаж по правилам ухода, кормления и содержания лабораторных животных. Не допускаются на работу в виварий (питомник) люди, больные туберкулёзом, кожными и др. инфекционными болезнями. Весь обслуживающий персонал должен периодически (не реже одного раза в год) пройти медицинский осмотр.

Работники вивария и другие лица проводящие эксперименты с лабораторными животными, заражёнными болезнями, опасными для человека (антропозоонозами), должны подвергаться профилактическим прививкам против соответствующих заболеваний (бешенство, сибирская язва и др.).

В виварии оборудуют индивидуальные шкафчики для домашней одежды и отдельно для спецодежды. Шкафчики периодически дезинфицируют (не реже одного раза в месяц).

В каждой рабочей комнате и в помещении, где размещаются животные, должны находиться аптечка, мыло, полотенца и растворы для дезинфекции рук. Все работники, находящиеся в виварии, а также другие лица проводящие эксперименты с лабораторными животными обязаны пользоваться спецодеждой и принимать душ для начала работы и по окончании её. Во всех производственных помещениях вивария запрещается курить и принимать пищу.

Размещено на Allbest.ru

Подобные документы

Санитарно-гигиенические требования к участку для строительства питомника. Способы содержания и перевозки собак. Состав и питательность кормов для животных. Гигиена поения, кормления и ухода за ними. Профилактика инфекционных и инвазионных заболеваний.

реферат , добавлен 24.01.2012


Основные системы содержания сельскохозяйственных животных и их характеристика. Гигиена содержания свиней, овец, лошадей и сельскохозяйственной птицы. Санитарно-гигиенические требования к участку для строительства животноводческих ферм и комплексов.

контрольная работа , добавлен 02.08.2015


Санитарно-гигиенические требования к животноводческим и птицеводческим помещениям и территории. Гигиена пастбищного содержания, транспортировки и ухода за животными, содержания крупного рогатого скота. Меры борьбы с насекомыми и грызунами в помещениях.

курсовая работа , добавлен 02.08.2015


Воздушная среда и влияние её факторов на животных. Устройства для поения животных. Санитарно-гигиенические требования к кормоприготовительному оборудованию. Системы и методы содержания свиней. Внутреннее оборудование свинарников, вентиляция помещений.

курсовая работа , добавлен 12.03.2012


Системы и способы содержания лошадей. Особенности конюшенной и табунной (пастбищной) систем содержания животных. Основные требования к помещениям и оборудованию. Гигиена жеребцов-производителей, жеребых кобыл. Гигиенические условия выращивания жеребят.

реферат , добавлен 22.01.2012


Структура и размеры коневодческих ферм. Нормативы при денниковом содержании. Гигиена поения рабочих лошадей. Зоогигиенические требования к ветеринарно-санитарным объектам. Санитарно-гигиеническая оценка технологии содержания, ухода, эксплуатации животных.

реферат , добавлен 26.10.2015


Режим работы и генеральный план откормочной свинофермы на 1100 голов. Санитарно-гигиенические требования к участку. Расчет размера помещения, освещенности, теплового баланса; оценка вентиляции. Способы навозоудаления, гигиена кормления и поения свиней.

курсовая работа , добавлен 06.11.2010


Задачи, стоящие перед специалистами по обеспечению продуктивности сельскохозяйственных животных и предупреждению их заболеваний. Системы содержания крупного рогатого скота. Гигиена клеточного содержания кур. Кастрация сельскохозяйственных животных.

контрольная работа , добавлен 17.09.2012


Системы и способы содержания кроликов. Полноценное кормление кроликов и его влияние на качество мяса и шкурок. Гигиена окрола и выращивания молодняка. Особенности системы содержания пушных зверей. Гигиена кормления и выращивания молодняка пушных зверей.

реферат , добавлен 22.01.2012


Обзор научной и методической литературы по гигиене содержания животных в фермерских хозяйствах. Ветеринарно-гигиенические обоснование параметров, оптимальные показатели микроклимата для животных в помещении. Санитарные требования качеству кормления.

ГОСТ 33216-2014

Группа Т58

МЕЖГОСУДАРСТВЕННЫЙ СТАНДАРТ

РУКОВОДСТВО ПО СОДЕРЖАНИЮ И УХОДУ ЗА ЛАБОРАТОРНЫМИ ЖИВОТНЫМИ

Guidelines for accommodation and care of animals. Species-specific provisions for laboratory rodents and rabbits

МКС 13.020.01

Дата введения 2016-07-01

Предисловие

Цели, основные принципы и основной порядок проведения работ по межгосударственной стандартизации установлены в ГОСТ 1.0-92 "Межгосударственная система стандартизации. Основные положения" и ГОСТ 1.2-2009 "Межгосударственная система стандартизации. Стандарты межгосударственные, правила, рекомендации по межгосударственной стандартизации. Правила разработки, принятия, применения, обновления и отмены"

Сведения о стандарте

1 РАЗРАБОТАН Некоммерческим партнерством "Объединение специалистов по работе с лабораторными животными" (Rus-LASA)

2 ВНЕСЕН Техническим комитетом по стандартизации ТК 339 "Безопасность сырья, материалов и веществ"

3 ПРИНЯТ Межгосударственным советом по стандартизации, метрологии и сертификации (протокол от 22 декабря 2014 г. N 73-П)

4 Приказом Федерального агентства по техническому регулированию и метрологии от 9 ноября 2015 г. N 1733-ст межгосударственный стандарт ГОСТ 33216-2014 введен в действие в качестве национального стандарта Российской Федерации с 1 июля 2016 г.

5 Настоящий стандарт соответствует международному документу European Convention for the protection of Vertebrate animals used for experimental and other scientific purposes (ETS N 123)* (Европейская конвенция о защите позвоночных животных, используемых в экспериментах и в других научных целях (ETS N 123)).
________________
* Доступ к международным и зарубежным документам, упомянутым здесь и далее по тексту, можно получить, перейдя по ссылке на сайт http://shop.cntd.ru . - Примечание изготовителя базы данных.


Перевод с английского языка (en).

Степень соответствия - неэквивалентная (NEQ)

6 ВВЕДЕН ВПЕРВЫЕ


Информация об изменениях к настоящему стандарту публикуется в ежегодном информационном указателе "Национальные стандарты", а текст изменений и поправок - в ежемесячном информационном указателе "Национальные стандарты". В случае пересмотра (замены) или отмены настоящего стандарта соответствующее уведомление будет опубликовано в ежемесячном информационном указателе "Национальные стандарты". Соответствующая информация, уведомление и тексты размещаются также в информационной системе общего пользования - на официальном сайте Федерального агентства по техническому регулированию и метрологии в сети Интернет

Введение

Введение

Государства - члены Совета Европы приняли решение о том, что их целью является охрана животных, используемых для экспериментальных и других научных целей, которое является гарантией того, что возможные боль, страдание, дистресс или повреждения, имеющие длительные последствия для здоровья, возникающие в результате процедур, будут сведены к минимуму.

Результатом стало подписание и ратификация большинством государств - членов Совета Европы (все государства Евросоюза, а также Македония, Норвегия, Сербия, Соединенное Королевство Великобритании и Северной Ирландии, Швейцария) Конвенции об охране позвоночных животных, используемых для экспериментов или в других научных целях ETS N 123, Страсбург, 18 марта 1986 г. (далее Конвенция).

Конвенция распространяет свое действие на все виды деятельности, связанные с использованием лабораторных животных: размещение и уход за ними, проведение экспериментов, гуманное умерщвление (эвтаназия), выдача разрешений на использование животных в процедурах, контроль над заводчиками, поставщиками и пользователями, обучение и профессиональная подготовка кадров, статистический учет. Конвенция имеет два технических приложения, содержащих руководство по содержанию и уходу за лабораторными животными (приложение А) и таблицы для представления статистической информации о количестве животных, использованных в научных целях (приложение В).

Минимум один раз в пять лет Конвенция подлежит пересмотру в ходе многосторонних консультаций сторон, проводимых рабочей группой, с целью анализа соответствия ее положений меняющимся обстоятельствам и новым научным данным. В результате принимается решение о пересмотре отдельных положений Конвенции или продлении их действия.

В ходе консультаций стороны привлекают государства, не являющиеся членами Совета Европы, а также взаимодействуют с негосударственными организациями, представляющими интересы ряда специалистов: исследователей, ветеринарных врачей, заводчиков лабораторных животных, ассоциаций по защите прав животных, специалистов в области наук о животных, представителей фарминдустрии и других, которые присутствуют на собраниях рабочей группы в качестве наблюдателей.

В 1998 г. стороны, подписавшие Конвенцию, приняли решение о пересмотре Приложения А. Рабочая группа завершила пересмотр приложения А на 8-м собрании (22-24 сентября 2004 г.) и предоставила его на утверждение Многосторонней консультации сторон. 15 июня 2006 г. 4-я Многосторонняя консультация сторон по Европейской Конвенции об охране позвоночных животных, используемых в экспериментах и в других научных целях приняла пересмотренное приложение А к Конвенции. Настоящее приложение устанавливает требования к содержанию и уходу за животными, основанные на современных знаниях и надлежащей практике. Оно поясняет и дополняет основные положения статьи N 5 Конвенции. Цель настоящего приложения - помощь государственным органам, институтам и физическим лицам в их стремлении к достижению целей Совета Европы в данном отношении.

Глава "Общая часть" является руководством по размещению, содержанию и уходу за всеми животными, используемыми в экспериментальных и иных научных целях. Дополнительные рекомендации по наиболее часто используемым видам приведены в соответствующих разделах. В случае отсутствия информации в таком разделе следует соблюдать требования, приведенные в общей части.

Видоспецифичные разделы составлены на основании рекомендаций экспертных групп по работе с грызунами, кроликами, собаками, кошками, хорьками, нечеловекообразными приматами, сельскохозяйственными животными, мини-свиньями, птицами, амфибиями, рептилиями и рыбами. Экспертные группы предоставили дополнительную научно-практическую информацию, на основании которой были даны рекомендации.

Приложение А включает советы по дизайну помещений для содержания животных (вивариев), а также рекомендации и руководства по соблюдению требований Конвенции. Однако рекомендуемые стандарты помещений являются минимально допустимыми. В ряде случаев может потребоваться их увеличение, так как индивидуальные потребности в микроокружении могут существенно отличаться в зависимости от вида животных, их возраста, физического состояния, плотности содержания, целей содержания животных, например, для разведения или экспериментов, а также от длительности их содержания.

Пересмотренное приложение А вступило в силу через 12 месяцев после его принятия - 15 июня 2007 г.

Настоящий стандарт разработан с учетом нормативных положений Европейской конвенции о защите позвоночных животных, используемых в экспериментах и в других научных целях (ETS N 123), в частности приложения А и статьи N 5 Конвенции.

Серия ГОСТ "Руководство по содержанию и уходу за лабораторными животными" разработана на основе и включает все положения приложения А к Конвенции об охране позвоночных животных, используемых в экспериментах и в других научных целях, и, таким образом, эти стандарты гармонизированы с европейскими требованиями в данной области.

1 Область применения

Настоящий стандарт устанавливает общие требования к размещению, содержанию и уходу за лабораторными грызунами и кроликами, используемыми в учебных, экспериментальных и иных научных целях.

2 Нормативные ссылки

В настоящем стандарте использована нормативная ссылка на следующий стандарт:

ГОСТ 33215-2014 Руководство по содержанию и уходу за лабораторными животными. Правила оборудования помещений и организации процедур

Примечание - При пользовании настоящим стандартом целесообразно проверить действие ссылочных стандартов в информационной системе общего пользования - на официальном сайте Федерального агентства по техническому регулированию и метрологии в сети Интернет или по ежегодному информационному указателю "Национальные стандарты", который опубликован по состоянию на 1 января текущего года, и по выпускам ежемесячного информационного указателя "Национальные стандарты" за текущий год. Если ссылочный стандарт заменен (изменен), то при пользовании настоящим стандартом следует руководствоваться заменяющим (измененным) стандартом. Если ссылочный стандарт отменен без замены, то положение, в котором дана ссылка на него, применяется в части, не затрагивающей эту ссылку.

3 Термины и определения

В настоящем стандарте применены термины с соответствующими определениями - по ГОСТ 33215-2014 .

4 Видоспецифичные требования к содержанию грызунов

4.1 Введение

4.1.1 Мыши

Лабораторная мышь была выведена из дикой домовой мыши (Mus musculus), норного и лазающего зверька, ведущего преимущественно ночной образ жизни и строящего гнезда для регуляции условий микросреды, укрытия и репродукции. Мыши очень хорошо лазают, однако неохотно пересекают открытые пространства и предпочитают держаться ближе к укрытиям - стенам или другим объектам. Тип социальной организации сообществ мышей варьирует и определяется в основном плотностью популяции. У репродуктивно активных самцов наблюдается выраженное территориальное поведение, беременные и кормящие самки могут проявить агрессию при защите гнезд. Так как мыши, особенно альбиносы, имеют плохое зрение, они в основном полагаются на обоняние и оставляют мочевые метки на участке обитания. У мышей также очень острый слух, они чувствительны к ультразвуку. Существуют значительные различия в поведении мышей разных линий.

4.1.2 Крысы

Лабораторная крыса была выведена из серой крысы (Rattus norvegicus). Крысы - социальные животные, они избегают открытые пространства и используют мочевые метки для маркировки территории. Обоняние и слух у них развиты сильно, при этом крысы особо чувствительны к ультразвуку; дневное зрение - слабое, но у некоторых пигментированных линий при неярком свете зрение достаточно острое. Крысы-альбиносы избегают освещенности свыше 25 люкс (лк). Активность крыс повышается в ночные часы. Молодые животные очень любопытны и часто устраивают социальные игры.

4.1.3 Песчанки

Монгольская или Полуденная песчанка (Meriones sp.) - социальное животное, ведущее преимущественно ночной образ жизни, однако в лабораторных условиях сохраняющее активность и при дневном свете. В дикой природе песчанки роют норы с туннельными входами для защиты от хищников и поэтому в лабораторных условиях зачастую демонстрируют стереотипное рытье, если им не предоставлены условия для рытья нор.

4.1.4 Хомячки

Дикий предок лабораторного хомячка - Mesocricetus sp. - животное, ведущее преимущественно одиночный образ жизни. Самки хомячков крупнее и агрессивнее самцов и могут сильно травмировать своего партнера. Хомячки часто устраивают в клетке обособленное место для туалета и маркируют территорию секретами желез, находящимися по бокам тела. Самки хомячков часто поедают детенышей, чтобы уменьшить количество потомства.

4.1.5 Морские свинки

Дикие морские свинки (Cavia porcellus) - социальные, активно перемещающиеся грызуны, которые никогда не роют норы, однако селятся в укрытиях или используют чужие норы. Взрослые самцы могут быть агрессивны по отношению друг к другу, но в целом агрессия наблюдается редко. Морские свинки имеют обыкновение замирать, если услышат неожиданный звук. Они могут целой группой панически броситься прочь в ответ на резкое и неожиданное движение. Морские свинки особенно чувствительны к перемещениям с места на место и после этого могут замирать на тридцать и более минут.

4.2 Контроль среды обитания

4.2.1 Вентиляция - по ГОСТ 33215-2014 , п.4.1.

4.2.2 Температура

Грызунов следует содержать при температуре от 20°С до 24°С. При групповом содержании температура в клетках со сплошным дном чаще бывает выше комнатной, и даже при хорошо работающей вентиляции может превышать ее на 6°С. Материал для строительства гнезд и домики позволяют животным самостоятельно контролировать микроклимат. Особое внимание следует уделять поддержанию температуры в барьерных системах и там, где содержатся животные, лишенные шерстного покрова.

4.2.3 Влажность

Относительная влажность в помещениях для содержания грызунов должна поддерживаться в диапазоне от 45% до 65%. Исключением являются песчанки, которых следует содержать при 35-55% относительной влажности.

4.2.4 Освещение

Освещенность клетки должна быть низкой. Стеллажи для клеток должны иметь затемненную верхнюю полку для снижения риска дегенерации сетчатки глаза у животных, особенно альбиносов, содержащихся в клетках верхнего яруса. Для наблюдения за животными в темноте в период их активной фазы, можно использовать невидимый грызунами красный свет.

4.2.5 Шум

Так как грызуны очень чувствительны к ультразвуку и используют его для общения, необходимо свести к минимуму посторонние звуковые сигналы в данном диапазоне. Ультразвук (свыше 20 кГц), издаваемый лабораторным оборудованием, в том числе капающими кранами, колесиками тележек и компьютерными мониторами, может стать причиной аномального поведения и нарушений репродуктивного цикла у животных. Рекомендуется периодически измерять уровень шума в помещениях для содержания животных в широком диапазоне частот и в течение длительного времени.

4.2.6 Требования к системам тревожной сигнализации - по ГОСТ 33215-2014 , п.4.6.

4.3 Условия и факторы, влияющие на здоровье животных, приведены в ГОСТ 33215-2014 , п.6.1 и 6.4.

4.4.1 Размещение

Социальные животные должны содержаться постоянными и гармоничными группами, хотя в отдельных случаях, например, при совместном содержании взрослых самцов мышей, хомячков или песчанок, групповое содержание проблематично из-за внутривидовой агрессии.

Если существует риск возникновения агрессии или травм, животных можно содержать индивидуально. Следует избегать нарушения стабильных и гармоничных групп, так как это может вызвать очень сильный стресс у животных.

4.4.2 Обогащение среды обитания

Клетки и материалы, используемые для обогащения среды, должны позволять животным проявлять нормальное поведение и снижать вероятность возникновения конфликтных ситуаций.

Подстил и материалы для создания гнезд, а также укрытия - важные компоненты среды обитания грызунов, используемых для разведения, поддержания колонии или в эксперименте. Они должны присутствовать в клетке постоянно, за исключением случаев, когда это противоречит ветеринарным соображениям или нарушает благосостояние животных. В случае необходимости удаления таких материалов из клеток следует согласовывать это с персоналом по уходу за животными и компетентным лицом, наделенным консультативными полномочиями по вопросам благополучия животных.

Материал для строительства гнезд должен позволять животным создавать законченное закрытое гнездо. При отсутствии такой возможности следует предоставлять животным домики для гнездовья. Подстилочный материал должен впитывать мочу и использоваться животными для оставления мочевых меток. Материалы для создания гнезд необходимы мышам, крысам, хомякам и песчанкам, так как позволяют им создавать подходящее микроокружение для отдыха и размножения. Гнездовые домики и другие укрытия важны для морских свинок, хомяков и крыс.

Морским свинкам всегда следует предоставлять материалы, такие как сено, чтобы они могли жевать его и прятаться в нем.

Деревянные палочки для грызения и жевания могут использоваться в качестве обогащения среды обитания всех лабораторных грызунов.

Представители большинства видов грызунов пытаются разделить клетку на несколько зон - для потребления и хранения корма, отдыха и мочеиспускания. В основе такого разделения может лежать запаховая метка, а не физический барьер, но, тем не менее, частичные заграждения могут быть полезны, так как они позволяют животным инициировать контакты с соседями по клетке или, наоборот, избегать их. Для усложнения среды очень рекомендуется использовать дополнительные объекты. Тубы, коробки и стеллажи для лазания - примеры конструкций, успешно используемых для грызунов. Помимо этого, они позволяют увеличить полезную площадь клетки.

Песчанки нуждаются в большем пространстве, чем грызуны других видов. Площадь клетки должна позволять им заниматься строительством и/или использовать норы подходящего размера. Песчанкам необходим толстый слой подстила для копания, построения гнезд и рытья нор, длина которых должна достигать 20 см.

Следует предусмотреть использование полупрозрачных или слегка окрашенных клеток, обеспечивающих хороший обзор для наблюдения за животными без причинения им беспокойства.

Те же принципы в отношении качества и количества пространства, материалов для обогащения среды и других требований, изложенных в настоящем документе, должны применяться к барьерным системам, например, к системам индивидуально вентилируемых клеток (ИВК), хотя особенности их конструкции могут потребовать изменений в реализации вышеизложенных принципов.

4.4.3 Ограждения: размеры и структура пола

Клетки должны быть сделаны из материалов, легко поддающихся чистке, а их дизайн - обеспечивать проведение наблюдений без причинения беспокойства животным.

Как только молодые животные становятся активными, им требуется пропорционально больше пространства, чем взрослым особям.

4.4.3.1 Размеры

В этой и последующих таблицах, представляющих рекомендации по содержанию грызунов, "высота клетки" означает расстояние между полом и верхом клетки, при этом более 50% минимальной площади клетки должно иметь данную высоту до помещения туда материалов для создания богатых стимулами условий (обогащение среды).

При планировании процедур необходимо учитывать возможность роста животных, для того чтобы обеспечить их достаточным жизненным пространством (как подробно показано в таблицах 1-5) на весь период исследования.

4.4.3.2 Структура пола

Сплошной пол с подстилочным материалом или пол с перфорацией, предпочтительнее решетчатых или сетчатых полов. В случае использования клеток с решетчатыми или сетчатыми полами животных необходимо, если это не противоречит условиям эксперимента, обеспечить сплошными или покрытыми подстилом участками пола для отдыха. Для морских свинок альтернативой могут быть перекладины. Допускается не использовать подстилочный материал при проведении спаривания животных.

Сетчатые полы могут стать причиной получения серьезных травм, поэтому следует тщательно проверять их на наличие плохо закрепленных деталей и острых выступов и своевременно их устранять.

Самки на поздних сроках беременности, во время родов и кормления детенышей должны содержаться исключительно в клетках со сплошным дном и подстилочным материалом.

Таблица 1 - Мыши: минимальные размеры клеток (ограждений)

Таблица 2 - Крысы: минимальные размеры клеток (ограждений)

Таблица 3 - Песчанки: минимальные размеры клеток (ограждений)

Таблица 4 - Хомячки: минимальные размеры клеток (ограждений)

Таблица 5 - Морские свинки: минимальные размеры клеток (ограждений)

4.4.4 Кормление - по ГОСТ 33215-2014 , п.6.6.

4.4.5 Поение - по ГОСТ 33215-2014 , п.6.7.

4.4.6 Подстилочный, гнездовой и абсорбирующий материал - по ГОСТ 33215-2014 , п.6.8.

4.4.7 Чистка клеток

Несмотря на необходимость поддержания высоких гигиенических норм, может оказаться целесообразным оставлять животным некоторое количество запаховых меток. Следует избегать слишком частой чистки клеток, особенно при содержании беременных самок и самок с потомством, так как причиняемое беспокойство может стать причиной поедания потомства самкой или нарушения ее материнского поведения.

Решение о частоте проведения чистки клеток должно приниматься с учетом типа используемой клетки, вида животных, плотности колонии, способности вентиляционных систем поддерживать необходимое качество воздуха в помещении.

4.4.8 Обращение с животными

Следует стремиться к тому, чтобы причинять животным минимальное беспокойство и не нарушать условия их содержания, что особенно важно для хомячков.

4.4.9 Эвтаназия - по ГОСТ 33215-2014 , п.6.11.

4.4.10 Ведение учетных записей - по ГОСТ 33215-2014 , п.6.12.

4.4.11 Идентификация - по ГОСТ 33215-2014 , п.6.13.

5 Видоспецифичные требования к содержанию кроликов

5.1 Введение

В природных условиях кролики (Oryctolagus cuniculi) живут колониями. При содержании в неволе им необходимо предоставлять достаточно пространства с обогащенной средой, нехватка которого может привести к утрате нормальной двигательной активности и возникновению скелетных аномалий.

5.2 Контроль среды обитания

5.2.1 Вентиляция - по ГОСТ 33215-2014 , п.4.1.

5.2.2 Температура

Кроликов следует содержать при температуре от 15°С до 21°С. Температура в ограждениях со сплошным дном, где содержится группа кроликов, чаще всего бывает выше комнатной и даже при хорошо работающей системе вентиляции может превышать ее на 6°С.

Материал для строения гнезд и/или домики дают животным возможность самостоятельно контролировать микроклимат. Особое внимание следует уделять показаниям температуры в барьерных системах.

5.2.3 Влажность

Относительная влажность воздуха в помещениях для содержания кроликов не должна быть ниже 45%.

5.4.1 Размещение

Молодых кроликов и самок следует содержать гармоничными группами. Одиночное содержание допустимо, если его причинами являются благосостояние животного или ветеринарные соображения. Решение о возможности одиночного содержание животных в экспериментальных целях должно приниматься после консультации с персоналом по уходу за животными и ответственным лицом, наделенным консультативными полномочиями по вопросам физического и психического состояния животных. Взрослые некастрированные самцы могут проявлять территориальную агрессию, поэтому их не следует держать вместе с другими некастрированными самцами. Для группового содержания молодняка и взрослых самок кроликов прекрасно зарекомендовали себя напольные загоны с насыщенной средой обитания. Тем не менее, следует внимательно следить за группой, чтобы предупредить возможную агрессию. Идеально подходят для группового содержания однопометники, живущие совместно с момента отлучения их от матери. В тех случаях, когда невозможно групповое содержание, животные должны находиться как можно ближе друг к другу, в пределах видимости.

5.4.2 Обогащение среды обитания

Подходящими материалами для обогащения среды обитания кроликов являются грубые корма, блоки сена или палочки для жевания, а также конструкции, позволяющие укрыться.

В напольных загонах для группового содержания следует предусмотреть размещение разделительных барьеров и сооружений-укрытий, позволяющих животным наблюдать оттуда. При разведении кроликов следует обеспечивать гнездовым материалом и родильными ящиками.

5.4.3 Ограждения: размеры и структура пола

Преимущество следует отдавать прямоугольным клеткам, в которых должна быть приподнятая область, площадью не превышающая 40% общей площади пола. Полка должна позволять животным сидеть и лежать, а также свободно двигаться под ней. Хотя высота клетки должна позволять кролику сидеть, не касаясь кончиками поднятых ушей потолка, такое же требование к приподнятой площадке не предъявляется. Если есть достаточные научные или ветеринарные основания для того, чтобы не размещать в клетке такую полку, то площадь клетки должна быть на 33% больше для одного кролика и на 60% - для двух кроликов. Там, где это возможно, кроликов следует содержать в загонах.

5.4.3.1 Размеры

Таблица 6 - Кролики старше 10 недель: минимальные размеры ограждений

Данные таблицы 6 относятся и к клеткам, и к вольерам. В клетках должна присутствовать приподнятая площадка (см. таблицу 9). Вольеры должны быть оборудованы разделительными барьерами, позволяющими животным инициировать социальные контакты или избегать их. Для каждого с 3-го по 6-го подсаживаемого в вольер кролика к площади вольера следует добавить 3000 см, а для каждого последующего - 2500 см.

Таблица 7 - Самка кролика с детенышами: минимальные размеры ограждений

Как минимум за 3-4 дня до родов самке следует предоставить отдельный отсек или родильный ящик, в котором она может построить гнездо. Лучше, если родильный ящик будет размещен вне места постоянного содержания самки. Следует также предоставить солому или другой материал для обустройства гнезда. Ограждение для разведения кроликов должно быть организовано таким образом, чтобы самка могла уйти от своих подросших крольчат, способных покинуть гнездо, в отдельный отсек, укрытие или на приподнятую площадку. После отлучения от матери кроликов из одного помета следует как можно дольше содержать вместе в том же ограждении, где они родились.

В ограждении для разведения допускается содержать до восьми однопометников до достижения ими возраста семи недель. Пять однопометников 8-10-недельного возраста можно содержать на минимально допустимой площади ограждения.


Таблица 8 - Кролики моложе 10-недельного возраста: минимальные размеры ограждений

Данные таблицы 8 относятся и к клеткам, и к вольерам. Вольеры должны быть оборудованы разделительными барьерами, позволяющими животным инициировать социальные контакты или избегать их. После отлучения от матери однопометников следует как можно дольше содержать вместе в том же ограждении, где они родились.


Таблица 9 - Кролики старше 10-недельного возраста: оптимальные размеры приподнятой площадки в ограждениях, имеющих размеры, указанные в таблице 6.

Для обеспечения правильного использования приподнятой площадки и ограждения в целом в таблице 9 приводятся оптимальные размеры и высота, на которой находится площадка. Допускается отклонение до 10% в сторону уменьшения или увеличения заданных размеров. Если имеются достаточные научные или ветеринарные основания для того, чтобы не размещать в ограждении такую полку, то площадь ограждения должна быть на 33% больше для одного кролика и на 60% - для двух кроликов с целью обеспечения их пространством для нормальной двигательной активности и возможностью избегать контакта с доминирующей особью.

Для кроликов не старше 10-недельного возраста оптимальные размеры приподнятой площадки составляют 55 см25 см, а высота ее над уровнем пола должна позволять животным пользоваться и площадкой, и пространством под ней.

5.4.3.2 Дно клеток

Не следует использовать ограждения с решетчатыми полами без обеспечения участка, достаточного для единовременного отдыха всех животных. Сплошные полы с подстилочным материалом или полы с перфорацией лучше решетчатых или сетчатых.
МКС 13.020.01

Ключевые слова: лабораторные животные, грызуны, кролики

Электронный текст документа
подготовлен АО "Кодекс" и сверен по:
официальное издание
М.: Стандартинформ, 2016

Немаловажное значение для токсикологического эксперимента имеют условия содержания подопытных животных. Содержание животных в условиях, вызывающих у них стресс (одиночное со­держание в пенале, грубая фиксация в нефизиологическом положении), приводит к увеличению токсичности. Изменения в пита­нии также сказываются на показателях токсичности.

Для экспериментальных исследований в токсикологических лабораториях используют крыс линии Вистар или белых беспо­родных крыс, которые являются альбиносами черной (Rattus rattus) и серой (пасюк - Rattus norvegicus) крыс, а также белых мы­шей, которые являются альбиносами домовой мыши (Mus musculus). И крысы, и мыши принадлежат к одному и тому же от­ряду грызунов (Rodentia), семейству мышиных (Muridae).

Важное преимущество белых крыс как лабораторных животных заключается в том, что они довольно устойчивы к инфекционным заболеваниям и дают большой приплод.

Белых крыс содержат в помещениях с хорошей вентиляцией, достаточным освещением и равномерной температурой - 20- 22 *С. Лабораторные крысы плохо переносят холод. Влажность воздуха в помещениях не должна превышать 40-45 %.

В качестве подстилки для животных используют крупные опилки, измельченный торф или сечку из соломы или бумаги, тряпки. В клетках поддерживают надлежащую чистоту. Они долж­ны быть всегда сухими, чистыми, хорошо вентилируемыми. Не допускают скопления в них мочи и фекалий.

Кроме ежедневной уборки клетки I -2 раза в месяц тщательно моют и дезинфицируют. Дезинфицировать клетки лучше всего крутым кипятком, горячим 5-10%-м раствором едкой щелочи или такими противомикробными средствами, как хлорная из­весть, креолин, сулема, формалин и др.

Крысы - всеядные животные, поэтому нельзя ограничивать их рацион только растительной пищей. Крысы, не получающие в не­обходимых количествах продукты животного происхождения (мо­локо, мясо, мясокостную муку), минеральные вещества и витами­ны, перестают расти.

Суточная потребность взрослой крысы в кормах составляет в среднем 30-32 г, из них 25 г смешанного корма и 5-7 г овощей.

Кормят крыс обычно 2 раза в сутки. Ввиду того что крысы ночные животные и едят в темное время суток, основную часть корма следует давать вечером, примерно к 20 ч. Не рекомендуется резко менять пищевой режим, к новой пище крыс нужно приучать постепенно. Вода для питья должна быть чистой и свежей, реко­мендуется пользоваться кипяченой водой. Заменять воду молоком также надо постепенно, в противном случае животные отказыва­ются от еды и заболевают.

что мыши более чувствительны к нарушениям температурного ре жима, смене корма и инфекционным заболеваниям (в частности сальмонеллезу). У мышей в гораздо большей степени, чем у крыс проявляется «социальная» иерархия в группе - борьба за лидер­ство, вследствие чего не рекомендуется изменять состав мышей Е клетках.

Суточная потребность взрослой мыши в кормах составляет Е среднем 9,5-10 г смешанного корма и 1-2 г овощей.